Здравоохранение Кыргызстана
Zdravoohraneniye Kyrgyzstana
ISSN 1694-8068 (Print)
ISSN 1694-805X (Online)

Проблемы ранней диагностики акральной лентигинозной меланомы у лиц азиатского происхождения, возможные пути их решения

Проблемы ранней диагностики акральной лентигинозной меланомы у лиц азиатского происхождения, возможные пути их решения
Полный текст Full text Толук текст  

Аннотация

Показатели заболеваемости раком кожи неуклонно растут во всем мире, причем более 90 % случаев смерти связаны с меланомой. Выживаемость при меланоме во многом зависит от толщины опухоли. Поэтому раннее выявление является наиболее важным шагом для улучшения прогноза. Акральная меланома представляет собой отдельный подтип меланомы на коже ладоней, подошв и ногтевом ложе. Это наиболее распространенный подтип меланомы у лиц азиатского происхождения. У пациентов акральную лентигинозную меланому обычно диагностируют на поздних стадиях заболевания с высокой вероятностью метастазирования. Имеются данные о повышенной смертности при акральных меланомах по сравнению с другими подтипами меланом. Несмотря на прогресс в понимании ключевых особенностей этого заболевания, диагностика акральной меланомы на ранней стадии все еще остается сложной задачей. На ранних стадиях заболевания, особенно у лиц азиатского происхож- дения возникает необходимость интеграции клинических, дерматоскопических, гистологических и молекулярных данных для успешной и своевременной диагностики акральной лентигинозной меланомы. Межпрофессиональное взаимодействие способствует раннему выявлению и своевременному лечению пациентов с акральной лентиги- нозной меланомой, что положительно отражается на уровне выживаемости.

Об авторах

Исупова Алена Анатольевна, кандидат медицинских наук, старший преподаватель кафедры дерматовенерологии и фтизиатрии Кыргызско-Российского Славянского университета им. Б.Н. Ельцина,
Бишкек, Кыргызская Республика;
Якубов Алмаз Салиевич, врач – онколог, Национального центра онкологии и гематологии, Бишкек, Кыргызская Республика;
Исупов Роман Вячеславович, аспирант, Кыргызско-Российского Славянского университета им. Б.Н.Ельцина, Бишкек,Кыргызская Республика;
Ланг Мария Юрьевна, ординатор кафедры дерматовенерологии и фтизиатрии Кыргызско-Российского славянского университета, Бишкек, Кыргызская Республика.

Isupova Alena Anatolyevna, Candidate of Medical Sciences, B.N. Yeltsin Kyrgyz-Russian Slavonic University, Senior Lecturer of the Department of Dermatovenerology and Phthisiology, Bishkek, Kyrgyz Republic;
Yakubov Almaz Salievich, oncologist, National Center Oncology and Hematology, Bishkek, Kyrgyz Republic;
Isupov Roman Alekeslavovich, PhD student, B.N. Yeltsin Kyrgyz-Russian Slavonic University, Bishkek, Kyrgyz Republic;
Lang Maria Yuryevna, Resident, Department of Dermatovenerology and Phthisiology, Kyrgyz-Russian Slavic University, Bishkek, Kyrgyz Republic.

Исупова Алена Анатольевна, медицина илимдеринин кандидаты, Б.Н. Ельцин атындагы Кыргыз-Орус Славян университети, тери-венерология жана фтизиатрия кафедрасынын ага окутуучусу, Бишкек, Кыргыз Республикасы;

Якубов Алмаз Салиевич, Улуттук онкология жана гематология борборунун онкологу, Бишкек шаары, Кыргыз Республикасы;

Исупов Роман Алекеславович, аспирант, Б.Н. Ельцин атындагы Кыргыз-Орус Славян университети, Бишкек, Кыргыз Республикасы;

Ланг Мария Юрьевна, Б.Н. Ельцин атындагы Кыргыз-Орус Славян университети тери-венерология жана фтизиатрия кафедрасынын ординатору, Бишкек, Кыргыз Республикасы.

Список литературы

1. Kolm I, Hofbauer G, Braun RP. Hautkrebsvorsorge [Early diagnosis of skin cancer]. Ther Umsch. 2010;67(9):439-46. German. doi: 10.1024/0040-5930/a000077
2. Mejbel HA, Torres-Cabala CA, Milton DR, Ivan D, Feldmeyer L, Namikawa K, Nagarajan P, Tetzlaff MT, Curry JL, Ross MI, Hwu WJ, Prieto VG, Aung PP. Prognostic significance of acral lentiginous histologic type in T1 melanoma. Mod Pathol. 2021 Mar;34(3):572-583. doi: 10.1038/s41379-020-0641-x
3. Basurto-Lozada P, Molina-Aguilar C, Castaneda-Garcia C, et al. Acral lentiginous melanoma: Basic facts, biological characteristics and research perspectives of an understudied disease. Pigment Cell Melanoma Res. 2021;34(1):59-71. doi:10.1111/pcmr.12885
4. Hogue L., Harvey V.M. Basal Cell Carcinoma, Squamous Cell Carcinoma, and Cutaneous Melanoma in Skin of Color Patients. Dermatol.Clin. 2019;37(4):519-526.
5. Ozdemir F, Errico MA, Yaman B, Karaarslan I. Acral lentiginous melanoma in the Turkish population and a new dermoscopic clue for the diagnosis. Dermatol Pract Concept. 2018;8(2):140-148. doi:10.5826/dpc.0802a14
6. Elefanti L, Zamuner C, Del Fiore P, Stagni C, Pellegrini S, Dall'Olmo L, Fabozzi A, Senetta R, Ribero S, Salmaso R, Mocellin S, Bassetto F, Cavallin F, Tosi AL, Galuppini F, Dei Tos AP, Menin C, Cappellesso R. The Molecular Landscape of Primary Acral Melanoma: A Multicenter Study of the Italian Melanoma Intergroup (IMI). Int J Mol Sci. 2021 Apr 7;22(8):3826. doi:10.3390/ijms22083826
7. Goydos JS, Shoen SL. Acral Lentiginous Melanoma. Cancer Treat Res. 2016;167:321-9. doi: 10.1007/978-3-319-22539-5_14
8. Saida T, Miyazaki A, Oguchi S, Ishihara Y, Yamazaki Y, Murase S, et al. Significance of dermoscopic patterns in detecting malignant melanoma on acral volar skin: results of a multicenter study in Japan. Arch Dermatol 2004; 140: 1233-1238. doi: 10.1001 / archderm.140.10.1233Fortin P.T.,
9. Freiberg A.A., Rees R., Sondak V.K., Johnson T.M. Malignant melanoma of the foot and ankle. J. Bone Jt. Surg. 1995;77:1396–1403. doi: 10.2106/00004623-199509000-00016
10. Howard MD, Xie C, Wee E, Wolfe R, McLean CA, Kelly JW, Pan Y. Acral lentiginous melanoma: differences in survival compared with other subtypes. Br J Dermatol. 2020 Apr;182(4):1056-1057. doi: 10.1111/bjd.18620.
11. Saida T, Koga H, Uhara H. Key points in dermoscopic differentiation between early acral melanoma and acral nevus. J Dermatol. 2011;38(1):25-34. doi: 10.1111/j.1346-8138.2010.01174.x.
12. Byrd KMWilson DCHoyler SSPeck GL Advanced presentation of melanoma in African Americans. J Am Acad Dermatol 2004;50 (1) 21- 24
13. Phan A, Dalle S, Touzet S, Ronger-Savlé S, Balme B, Thomas L. Dermoscopic features of acral lentiginous melanoma in a large series of 110 cases in a white population. Br J Dermatol. 2010 Apr;162(4):765-71. doi: 10.1111/j.1365-2133.2009.09594.x. Epub 2009 Nov 18. PMID: 19922528.
14. Desai A, Ugorji R, Khachemoune A. Acral melanoma foot lesions. Part 1: epidemiology, aetiology, and molecular pathology. Clin Exp Dermatol. 2017 Dec;42(8):845-848. doi: 10.1111/ced.13243
15. Bradford PT, Goldstein AM, McMaster ML, Tucker MA. Acral lentiginous melanoma: incidence and survival patterns in the United States, 1986-2005. Arch Dermatol. 2009;145(4):427-434. doi:10.1001/archdermatol.2008.609
16. Arrington JH, Reed RJ, Ichinose H, Krementz ET. Plantar lentiginous melanoma: A distinctive variant of human cutaneous malignant melanoma. Am Journal of Surgical Pathology. 1977;1(2):131–143.
17. Durbec F., Martin L., Derancourt C., Grange F. Melanoma of the hand and foot: Epidemiological, prognostic and genetic features. A systematic review. Br. J. Dermatol. 2012;166:727–739. doi: 10.1111/j.1365-2133.2011.10772.x 9-12
18. Markovic SN, Erickson LA, Rao RD, Weenig RH, Pockaj BA, Bardia A, Vachon CM, Schild SE, McWilliams RR, Hand JL, Laman SD, Kottschade LA, Maples WJ, Pittelkow MR, Pulido JS, Cameron JD, Creagan ET; Melanoma Study Group of the Mayo Clinic Cancer Center. Malignant melanoma in the 21st century, part 1: epidemiology, risk factors, screening, prevention, and diagnosis. Mayo Clin Proc. 2007 Mar;82(3):364-80. doi: 10.4065/82.3.364
19. Cabrera, M., Silva, V., Díaz de Medina, DJ, Hoell, B., Guglielmetti, V., Rohmann, K. et al. (1994). Estudio clinico de 113 casos demelanoma maligno . Revista Medica de Chile , 122 ( 8 ), 900–906.
20. Feibleman CE, Stoll H, Maize JC. Melanomas of the palm, sole, and nailbed: a clinicopathologic study. Cancer. 1980 Dec1;46(11):2492-504. doi:10.1002/1097-0142(19801201)46:11<2492::aid cncr2820461130>3.0.co;2-j
21. Minagawa A, Omodaka T, Okuyama R. Melanomas and Mechanical Stress Points on the Plantar Surface of the Foot. N Engl J Med. 2016 Jun 16;374(24):2404-6
22. Sheen, Y.‐S. , Liao, Y.‐H. , Lin, M.‐H. , Chen, J.‐S. , Liau, J.‐Y. , Tseng, Y.‐J., et al. A clinicopathological analysis of 153 acralmelanomas and the relevance of mechanical stress. Scientific Reports, 2017; 7(1), 5564.
23. Gandini S, Sera F, Cattaruzza MS, et al. Meta-analysis of risk factors for cutaneous melanoma: II. Sun exposure. Eur J Cancer. 2005;41:45–60
24. Usher-Smith JA, Emery J, Kassianos AP, Walter FM. Risk prediction models for melanoma: a systematic review. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2014;23:1450–63.
25. Gruber SB, Armstrong BK. Cutaneous and ocular melanoma. In: Schottenfeld D, Fraumeni JF, editors. Cancer Epidemiology and Prevention. New York, NY: Oxford University Press; 2006. pp. 1196–1229.
26. Garibyan L,Fisher DE.How sunlight causes melanoma.Curr Oncol Rep.2010 Sep;12(5):319-26. doi: 10.1007/s11912-010-0119-y.
27. Elder DE, Bastian BC, Cree IA, Massi D, Scolyer RA. The 2018 World Health Organization Classification of Cutaneous, Mucosal, and Uveal Melanoma: Detailed Analysis of 9 Distinct Subtypes Defined by Their Evolutionary Pathway. Arch Pathol Lab Med. 2020 Apr;144(4):500-522. doi: 10.5858/arpa.2019-0561-RA.
28. Fallah, M. , Pukkala, E. , Sundquist, K. , Tretli, S. , Olsen, J. H. , Tryggvadottir, L. , & Hemminki, K. (2014). Familial melanoma by histology and age: Joint data from five Nordic countries. European Journal of Cancer, 2014; 50(6), 1176–1183.10.1016/j.ejca.2013.12.023
29. Liu XK, Li J. Acral lentiginous melanoma. Lancet.2018 Jun 9;391(10137):e21. doi: 10.1016/S0140-6736(18)31071-7.]. Bello DM,Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0
30. Bradford P.T. Skin Cancer in Skin of Color. Dermatol Nurs. 2009:21(4): 170–178].
31. Ward-Peterson M, Acuna JM, Alkhalifah MK, Nasiri AM, Al-Akeel ES, Alkhaldi TM, et al. Association between race/ethnicity and survival of melanoma patients in the United States over 3 decades: A secondary analysis of SEER data. Medicine. 2016;95(17):e3315.
32. Culp MB, Lunsford NB. Melanoma Among Non-Hispanic Black Americans. Prev Chronic Dis 2019;16:180640.
33. Oh TS, Bae EJ, Ro KW, Seo SH, Son SW, Kim IH. Acral Lentiginous Melanoma Developing during Long-standing Atypical Melanosis: Usefulness of Dermoscopy for Detection of Early Acral Melanoma. Ann Dermatol. 2011;23(3):400-404. doi:10.5021/ad.2011.23.3.400
34. Park HS, Cho KH. Acral lentiginous melanoma in situ: a diagnostic and management challenge. Cancers (Basel). 2010;2(2):642-652. doi:10.3390/cancers2020642.
35. Breslow A. Thickness, cross-sectional areas and depth of invasion in the prognosis of cutaneous melanoma. Ann Surg. 1970 Nov;172(5):902-8. doi: 10.1097/00000658-197011000-00017.12885
36. Seyed Jafari SM, Lieberherr S, Cazzaniga S, Beltraminelli H, Haneke E, Hunger RE. Melanoma of the Nail Apparatus: An Analysis of Patients' Survival and Associated Factors. Dermatology. 2022;238(1):156-160. doi: 10.1159/000514493.
37. Liopyris K., Navarrete-Dechent C., Mancebo S.E. et al. Dermoscopic appearance of amelanotic volar melanoma compared with volar angioma. JAMA Dermatol. 2019;155(4):500-501. doi:10.1001/jamadermatol.2018.5487
38. Chang JW. Acral Melanoma: A Unique Disease in Asia. JAMA Dermatol. 2013;149(11):1272–1273. doi:10.1001/jamadermatol.2013.5941
39. Bello DM, Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0.
40. Zell JA, Cinar P, Mobasher M, Ziogas A, Meyskens FL Jr, Anton-Culver H. Survival for patients with invasive cutaneous melanoma among ethnic groups: the effects of socioeconomic status and treatment. J Clin Oncol. 2008 Jan 1;26(1):66-75. doi:10.1200/JCO.2007.12.3604.
41. Hall KH, Rapini RP. Acral Lentiginous Melanoma. 2021 Jul 28. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan–. PMID: 32644539.
42. Rigby HS, Briggs JC. Subungual melanoma: a clinico-pathological study of 24 cases. Br J Plast Surg. 1992 May-Jun;45(4):275-8. doi: 10.1016/0007-1226(92)90051-x
43. Mikhail GR. Hutchinson's sign. J Dermatol Surg Oncol. 1986 May;12(5):519-21. doi: 10.1111/j.1524 4725.1986.tb01943.x
44. DeMartinis NC, Cohen PR. Non-Melanoma-Associated Dyschromia of the Proximal Nail Fold. Cureus. 2016;9;8(12):e922. doi:10.7759/cureus.922.
45. Kawabata Y, Ohara K, Hino H, Tamaki K. Two kinds of Hutchinson's sign, benign and malignant. J Am Acad Dermatol. 2001 Feb;44(2):305-7. doi: 10.1067/mjd.2001.112398
46. Dika E, Patrizi A, Fanti PA, Chessa MA, Reggiani C, Barisani A, Piraccini BM. The Prognosis of Nail Apparatus Melanoma: 20 Years of Experience from a Single Institute. Dermatology. 2016;232(2):177-84. doi: 10.1159/000441293
47. Blessing K., Kernohan N.M., Park K.G.M. Subungual malignant melanoma: Clinicopathological features of 100 cases. Histopathology. 1991;19:425–430. doi: 10.1111/j.1365-2559.1991.tb00232.x.
48. Geizhals S, Lipner SR. Retrospective Case Series on Risk Factors, Diagnosis and Treatment of Pseudomonas aeruginosa Nail In fections. Am J Clin Dermatol. 2020 Apr;21(2):297-302. doi: 10.1007/s40257-019-00476-0.
49. Lee H, Mun JH, Cho S, Park H. Clinical analysis of Pseudomonas aeruginosa-positive and -negative green nail syndrome cases:A single center retrospective analysis. J Dermatol. 2021 Jul;48(7):1073-1076. doi: 10.1111/1346-8138.15832.
50. Glaser DA, Remlinger K. Blue nails and acquired immunodeficiency syndrome: not always associated with azidothymidine use.Cutis. 1996 ;57(4):243-4.
51. Vignes S, Baran R. Yellow nail syndrome:a review. Orphanet J Rare Dis. 2017 Feb 27;12(1):42. doi:10.1186/s13023-017-0594-4.
52. Tokonami A, Ohta R, Tanaka Y, Amano S, Sano C. Pericarditis With Cardiac Tamponade Mimicking Yellow Nail Syndrome in a Patient With Rheumatoid Arthritis and a Paucity of Joint Symptoms. Cureus. 2022 Jan 23;14(1):e21523. doi: 10.7759/cureus.21523.
53. Fukaya T, Kasai H, Saito M, Sasatani Y, Urushibara T, Sakao S. Yellow nail syndrome with massive chylothorax after esophagectomy: A case report. Respir Med Case Rep. 2021 Jun 12;33:101448. doi: 10.1016/j.rmcr.2021.101448.
54. Akcam M, Artan R, Akcam FZ, Yilmaz A. Nail discoloration induced by doxycycline. Pediatr Infect Dis J. 2005 Sep;24(9):845-6. doi: 10.1097/01.inf.0000177283.71692.56
55. Oppel T, Korting HC. Onychodystrophy and its management. Ger Med Sci. 2003;1:Doc02.
56. Kaur R, Kashyap B, Bhalla P. Onychomycosis--epidemiology, diagnosis and management. Indian J Med Microbiol. 2008 Apr-Jun;26(2):108-16
57. Jefferson J, Rich P. Melanonychia. Dermatol Res Pract. 2012;2012:952186. doi: 10.1155/2012/952186.
58. Skowron F, Combemale P, Faisant M, Baran R, Kanitakis J, Dupin M. Functional melanonychia due to involvement of the nail matrix in systemic lupus erythematosus. J Am Acad Dermatol. 2002 Aug;47(2 Suppl):S187-8. doi: 10.1067/mjd.2002.108494.
59. Koch K, Tikly M. Spectrum of cutaneous lupus erythematosus in South Africans with systemic lupus erythematosus. Lupus. 2019 Jul;28(8):1021-1026. doi: 10.1177/0961203319856091
60. Singal A, Bisherwal K. Melanonychia: Etiology, Diagnosis, and Treatment. Indian Dermatol Online J. 2020;11(1):1-11. Published 2020 Jan 13. doi:10.4103/idoj.IDOJ_167_19
61. Richert B, Iorizzo M, Tosti A, André J. Nail bed lichen planus associated with onychopapilloma. 2007; 156(5) 5:1071-1072.
62. Kumar S, Dixit R, Karmakar S, Paul S. Unusual nail pigmentation following cyclophosphamide-containing chemotherapy regimen. Indian J Pharmacol. 2010 Aug;42(4):243-4. doi: 10.4103/0253-7613.68433
63. Daniel CR, Scher RK. Nail changes caused by systemic drugs or ingestants. Dermatol Clin. 1985 Jul;3(3):491-500.
64. André J, Lateur N. Pigmented nail disorders. Dermatol Clin. 2006;24(3):329-39.

65. Baran R, Kechijian P. Longitudinal melanonychia (melanonychia striata): diagnosis and management. J Am Acad Dermatol. 1989 Dec;21(6):1165-75. doi: 10.1016/s0190-9622(89)70324-8

66. Fernandez‐Flores, A. , & Cassarino, D. S. Histopathological diagnosis of acral lentiginous melanoma in early stages. Annals of Diagnostic Pathology, 2017; 26, 64–69. 10.1016/j.anndiagpath.2016.08.005
67. Goettmann-Bonvallot S, André J, Belaich S. Longitudinal melanonychia in children: a clinical and histopathologic study of 40 cases. J Am Acad Dermatol. 1999 Jul;41(1):17-22. doi: 10.1016/s0190-9622(99)70399-3.
68. Yim SH, Kwon IS, Hong D, Jung KE, Lee Y, Seo YJ, Choi CW. Predictor of Subungual Melanoma against Benign Longitudinal Melanonychia: A Retrospective Cohort Study from Korea. Ann Dermatol. 2021 Apr;33(2):147-153. doi: 10.5021/ad.2021.33.2.147.
69. Ko D, Oromendia C, Scher R, Lipner SR. Retrospective single-center study evaluating clinical and dermoscopic features of lon gitudinal melanonychia, ABCDEF criteria, and risk of malignancy. J Am Acad Dermatol. 2019 May;80(5):1272-1283. doi:10.1016/j.jaad.2018.08.033.
70. Levit EK, Kagen MH, Scher RK, Grossman M, Altman E. The ABC rule for clinical detection of subungual melanoma. J Am AcadDermatol. 2000 Feb;42(2 Pt 1):269-74. doi: 10.1016/S0190-9622(00)90137-3.
71. Sawada M, Yokota K, Matsumoto T, Shibata S, Yasue S, Sakakibara A, Kono M, Akiyama M. Proposed classification of longitudinal melanonychia based on clinical and dermoscopic criteria. Int J Dermatol. 2014 May;53(5):581-5. doi: 10.1111/ijd.12001
72. Ezenwa E, Stein JA, Krueger L. Dermoscopic features of neoplasms in skin of color: A review. Int J Womens Dermatol. 2021;7(2):145-151. Published 2021 Jan 19. doi:10.1016/j.ijwd.2020.11.009
73. Braun RP, Thomas L, Dusza SW, Gaide O, Menzies S, Dalle S, Blum A, Argenziano G, Zalaudek I, Kopf A, Rabinovitz H, Oliviero M, Perrinaud A, Cabo H, Pizzichetta M, Pozo L, Langford D, Tanaka M, Saida T, Perusquia Ortiz AM, Kreusch J, De Giorgi V, Piccolo D, Grichnik JM, Kittler H, Puig S, Malvehy J, Seidenari S, Stanganelli I, French L, Marghoob AA. Dermoscopy of acral melanoma: a multicenter study on behalf of the international dermoscopy society. Dermatology. 2013;227(4):373-80. doi:10.1159/000356178.
74. Pehamberger H, Steiner A, Wolff K. In vivo epiluminescence microscopy of pigmented skin lesions. I. Pattern analysis of pigmented skin lesions. J Am Acad Dermatol. 1987;17:571–583. doi: 10.1016/S0190-9622(87)70239-4
75. Kittler H. Evolution of the Clinical, Dermoscopic and Pathologic Diagnosis of Melanoma. Dermatol Pract Concept. 2021 Jul 1;11(Suppl 1):e2021163S. doi: 10.5826/dpc.11S1a163S
76. Lallas, A. , Kyrgidis, A. , Koga, H. , Moscarella, E. , Tschandl, P. , Apalla, Z. , … Argenziano, G. (2015). The BRAAFF checklist: A new dermoscopic algorithm for diagnosing acral melanoma. British Journal of Dermatology, 173(4), 1041–1049.
77. Saida T, Koga H. Dermoscopic patterns of acral melanocytic nevi: their variations, changes, and significance. Arch Dermatol. 2007 Nov;143(11):1423-6. doi: 10.1001/archderm.143.11.1423.
78. Wawrzynkiewicz M, Pastuszczak M, Chlebicki M, Wojas-Pelc A. Acral melanocytic nevi in the Polish population: prevalence, clinical characteristics and dermoscopic patterns. Postepy Dermatol Alergol. 2019 Oct;36(5):581-588. doi: 10.5114/ada.2018.77500.
79. Han B, Hur K, Ohn J, Lim SS, Mun JH. Acral lentiginous melanoma in situ: dermoscopic features and management strategy. SciRep. 2020 Nov 25;10(1):20503. doi: 10.1038/s41598-020-77425-z.
80. Darmawan CC, Jo G, Montenegro SE, Kwak Y, Cheol L, Cho KH, Mun JH. J Am Acad Dermatol. Early detection of acral melanoma: A review of clinical, dermoscopic, histopathologic, and molecular characteristics.2019; 81(3):805-812.
81. Roh D, Shin K, Kim WI, Yang MY, Lee WK, Kim HS, Ko HC, Kim BS, Kim MB. Comparison of dermoscopic features between congenital and acquired acral melanocytic nevi in Korean patients. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020 May;34(5):1004-1009. doi: 10.1111/jdv.16089.
82. Braun RP, Baran R, Saurat JH, Thomas L. Surgical Pearl: Dermoscopy of the free edge of the nail to determine the level of nail plate pigmentation and the location of its probable origin in the proximal or distal nail matrix. J Am Acad Dermatol. 2006 Sep;55(3):512-3. doi: 10.1016/j.jaad.2005.09.032
83. Jellinek N. Nail matrix biopsy of longitudinal melanonychia: diagnostic algorithm including the matrix shave biopsy. J Am Acad Dermatol. 2007 May;56(5):803-10. doi: 10.1016/j.jaad.2006.12.001
84. Starace M, Alessandrini A, Brandi N, Piraccini BM. Use of Nail Dermoscopy in the Management of Melanonychia: Review. Dermatol Pract Concept. 2019 ;9(1):38-43. doi: 10.5826/dpc.0901a10
85. Tosti A, Piraccini BM, de Farias DC. Dealing with melanonychia. Semin Cutan Med Surg. 2009;28(1):49–54.
86. Hirata SH, Yamada S, Enokihara MY, et al. Patterns of nail matrix and bed of longitudinal melanonychia by intraoperative der matoscopy. J Am Acad Dermatol. 2011;65(2):297–303.
87. Xavier-Júnior JC, Munhoz T, Souza V, de Campos EB, Stolf HO, Marques ME. Focal invasiveness in complete histological analyses of a large acral lentiginous melanoma. Diagn Pathol. 2015 Jun 20;10:73. doi: 10.1186/s13000-015-0307-z
88. Montenegro Jaramillo SE, Jo G, Darmawan CC, Lee C, Mun JH. Dermoscopic findings of Spitz nevus on acral volar skin. Indian J Dermatol Venereol Leprol. 2019 Nov-Dec;85(6):629-632. doi: 10.4103/ijdvl.IJDVL_728_18
89. Wiedemeyer K, Guadagno A, Davey J, Brenn T. Acral spitz nevi: A clinicopathologic study of 50 cases with immunohistochemical analysis of P16 and P21 expression. Am J Surg Pathol 2018;42:821-7.
90. Yamaura M, Takata M, Miyazaki A, Saida T. Specific dermoscopy patterns and amplifications of the cyclin D1 gene to define histopathologically unrecognizable early lesions of acral melanoma in situ. Arch. Dermatol. 2005;141:1413–1418. doi: 10.1001/arch derm.141.11.1413
91. Zeng W, Zhang W, Feng J, He X, Lu H. Expression of OPN3 in acral lentiginous melanoma and its associated with clinico histopathologic features and prognosis. Immun Inflamm Dis. 2021 Sep;9(3):840-850. doi: 10.1002/iid3.438
92. Puglisi R, Bellenghi M, Pontecorvi G, Pallante G, Carè A, Mattia G. Biomarkers for Diagnosis, Prognosis and Response to Immunotherapy in Melanoma. Cancers (Basel). 2021 Jun 9;13(12):2875. doi: 10.3390/cancers13122875

 

1. Kolm I, Hofbauer G, Braun RP. Hautkrebsvorsorge [Early diagnosis of skin cancer]. Ther Umsch. 2010;67(9):439-46. German. doi: 10.1024/0040-5930/a000077
2. Mejbel HA, Torres-Cabala CA, Milton DR, Ivan D, Feldmeyer L, Namikawa K, Nagarajan P, Tetzlaff MT, Curry JL, Ross MI, Hwu WJ, Prieto VG, Aung PP. Prognostic significance of acral lentiginous histologic type in T1 melanoma. Mod Pathol. 2021 Mar;34(3):572-583. doi: 10.1038/s41379-020-0641-x
3. Basurto-Lozada P, Molina-Aguilar C, Castaneda-Garcia C, et al. Acral lentiginous melanoma: Basic facts, biological characteristics and research perspectives of an understudied disease. Pigment Cell Melanoma Res. 2021;34(1):59-71. doi:10.1111/pcmr.12885
4. Hogue L., Harvey V.M. Basal Cell Carcinoma, Squamous Cell Carcinoma, and Cutaneous Melanoma in Skin of Color Patients. Dermatol.Clin. 2019;37(4):519-526.
5. Ozdemir F, Errico MA, Yaman B, Karaarslan I. Acral lentiginous melanoma in the Turkish population and a new dermoscopic clue for the diagnosis. Dermatol Pract Concept. 2018;8(2):140-148. doi:10.5826/dpc.0802a14
6. Elefanti L, Zamuner C, Del Fiore P, Stagni C, Pellegrini S, Dall'Olmo L, Fabozzi A, Senetta R, Ribero S, Salmaso R, Mocellin S, Bassetto F, Cavallin F, Tosi AL, Galuppini F, Dei Tos AP, Menin C, Cappellesso R. The Molecular Landscape of Primary Acral Melanoma: A Multicenter Study of the Italian Melanoma Intergroup (IMI). Int J Mol Sci. 2021 Apr 7;22(8):3826. doi:10.3390/ijms22083826
7. Goydos JS, Shoen SL. Acral Lentiginous Melanoma. Cancer Treat Res. 2016;167:321-9. doi: 10.1007/978-3-319-22539-5_14
8. Saida T, Miyazaki A, Oguchi S, Ishihara Y, Yamazaki Y, Murase S, et al. Significance of dermoscopic patterns in detecting malignant melanoma on acral volar skin: results of a multicenter study in Japan. Arch Dermatol 2004; 140: 1233-1238. doi: 10.1001 / archderm.140.10.1233Fortin P.T.,
9. Freiberg A.A., Rees R., Sondak V.K., Johnson T.M. Malignant melanoma of the foot and ankle. J. Bone Jt. Surg. 1995;77:1396–1403. doi: 10.2106/00004623-199509000-00016
10. Howard MD, Xie C, Wee E, Wolfe R, McLean CA, Kelly JW, Pan Y. Acral lentiginous melanoma: differences in survival compared with other subtypes. Br J Dermatol. 2020 Apr;182(4):1056-1057. doi: 10.1111/bjd.18620.
11. Saida T, Koga H, Uhara H. Key points in dermoscopic differentiation between early acral melanoma and acral nevus. J Dermatol. 2011;38(1):25-34. doi: 10.1111/j.1346-8138.2010.01174.x.
12. Byrd KMWilson DCHoyler SSPeck GL Advanced presentation of melanoma in African Americans. J Am Acad Dermatol 2004;50 (1) 21- 24
13. Phan A, Dalle S, Touzet S, Ronger-Savlé S, Balme B, Thomas L. Dermoscopic features of acral lentiginous melanoma in a large series of 110 cases in a white population. Br J Dermatol. 2010 Apr;162(4):765-71. doi: 10.1111/j.1365-2133.2009.09594.x. Epub 2009 Nov 18. PMID: 19922528.
14. Desai A, Ugorji R, Khachemoune A. Acral melanoma foot lesions. Part 1: epidemiology, aetiology, and molecular pathology. Clin Exp Dermatol. 2017 Dec;42(8):845-848. doi: 10.1111/ced.13243
15. Bradford PT, Goldstein AM, McMaster ML, Tucker MA. Acral lentiginous melanoma: incidence and survival patterns in the United States, 1986-2005. Arch Dermatol. 2009;145(4):427-434. doi:10.1001/archdermatol.2008.609
16. Arrington JH, Reed RJ, Ichinose H, Krementz ET. Plantar lentiginous melanoma: A distinctive variant of human cutaneous malignant melanoma. Am Journal of Surgical Pathology. 1977;1(2):131–143.
17. Durbec F., Martin L., Derancourt C., Grange F. Melanoma of the hand and foot: Epidemiological, prognostic and genetic features. A systematic review. Br. J. Dermatol. 2012;166:727–739. doi: 10.1111/j.1365-2133.2011.10772.x 9-12
18. Markovic SN, Erickson LA, Rao RD, Weenig RH, Pockaj BA, Bardia A, Vachon CM, Schild SE, McWilliams RR, Hand JL, Laman SD, Kottschade LA, Maples WJ, Pittelkow MR, Pulido JS, Cameron JD, Creagan ET; Melanoma Study Group of the Mayo Clinic Cancer Center. Malignant melanoma in the 21st century, part 1: epidemiology, risk factors, screening, prevention, and diagnosis. Mayo Clin Proc. 2007 Mar;82(3):364-80. doi: 10.4065/82.3.364
19. Cabrera, M., Silva, V., Díaz de Medina, DJ, Hoell, B., Guglielmetti, V., Rohmann, K. et al. (1994). Estudio clinico de 113 casos demelanoma maligno . Revista Medica de Chile , 122 ( 8 ), 900–906.
20. Feibleman CE, Stoll H, Maize JC. Melanomas of the palm, sole, and nailbed: a clinicopathologic study. Cancer. 1980 Dec1;46(11):2492-504. doi:10.1002/1097-0142(19801201)46:11<2492::aid cncr2820461130>3.0.co;2-j
21. Minagawa A, Omodaka T, Okuyama R. Melanomas and Mechanical Stress Points on the Plantar Surface of the Foot. N Engl J Med. 2016 Jun 16;374(24):2404-6
22. Sheen, Y.‐S. , Liao, Y.‐H. , Lin, M.‐H. , Chen, J.‐S. , Liau, J.‐Y. , Tseng, Y.‐J., et al. A clinicopathological analysis of 153 acralmelanomas and the relevance of mechanical stress. Scientific Reports, 2017; 7(1), 5564.
23. Gandini S, Sera F, Cattaruzza MS, et al. Meta-analysis of risk factors for cutaneous melanoma: II. Sun exposure. Eur J Cancer. 2005;41:45–60
24. Usher-Smith JA, Emery J, Kassianos AP, Walter FM. Risk prediction models for melanoma: a systematic review. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2014;23:1450–63.
25. Gruber SB, Armstrong BK. Cutaneous and ocular melanoma. In: Schottenfeld D, Fraumeni JF, editors. Cancer Epidemiology and Prevention. New York, NY: Oxford University Press; 2006. pp. 1196–1229.
26. Garibyan L,Fisher DE.How sunlight causes melanoma.Curr Oncol Rep.2010 Sep;12(5):319-26. doi: 10.1007/s11912-010-0119-y.
27. Elder DE, Bastian BC, Cree IA, Massi D, Scolyer RA. The 2018 World Health Organization Classification of Cutaneous, Mucosal, and Uveal Melanoma: Detailed Analysis of 9 Distinct Subtypes Defined by Their Evolutionary Pathway. Arch Pathol Lab Med. 2020 Apr;144(4):500-522. doi: 10.5858/arpa.2019-0561-RA.
28. Fallah, M. , Pukkala, E. , Sundquist, K. , Tretli, S. , Olsen, J. H. , Tryggvadottir, L. , & Hemminki, K. (2014). Familial melanoma by histology and age: Joint data from five Nordic countries. European Journal of Cancer, 2014; 50(6), 1176–1183.10.1016/j.ejca.2013.12.023
29. Liu XK, Li J. Acral lentiginous melanoma. Lancet.2018 Jun 9;391(10137):e21. doi: 10.1016/S0140-6736(18)31071-7.]. Bello DM,Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0
30. Bradford P.T. Skin Cancer in Skin of Color. Dermatol Nurs. 2009:21(4): 170–178].
31. Ward-Peterson M, Acuna JM, Alkhalifah MK, Nasiri AM, Al-Akeel ES, Alkhaldi TM, et al. Association between race/ethnicity and survival of melanoma patients in the United States over 3 decades: A secondary analysis of SEER data. Medicine. 2016;95(17):e3315.
32. Culp MB, Lunsford NB. Melanoma Among Non-Hispanic Black Americans. Prev Chronic Dis 2019;16:180640.
33. Oh TS, Bae EJ, Ro KW, Seo SH, Son SW, Kim IH. Acral Lentiginous Melanoma Developing during Long-standing Atypical Melanosis: Usefulness of Dermoscopy for Detection of Early Acral Melanoma. Ann Dermatol. 2011;23(3):400-404. doi:10.5021/ad.2011.23.3.400
34. Park HS, Cho KH. Acral lentiginous melanoma in situ: a diagnostic and management challenge. Cancers (Basel). 2010;2(2):642-652. doi:10.3390/cancers2020642.
35. Breslow A. Thickness, cross-sectional areas and depth of invasion in the prognosis of cutaneous melanoma. Ann Surg. 1970 Nov;172(5):902-8. doi: 10.1097/00000658-197011000-00017.12885
36. Seyed Jafari SM, Lieberherr S, Cazzaniga S, Beltraminelli H, Haneke E, Hunger RE. Melanoma of the Nail Apparatus: An Analysis of Patients' Survival and Associated Factors. Dermatology. 2022;238(1):156-160. doi: 10.1159/000514493.
37. Liopyris K., Navarrete-Dechent C., Mancebo S.E. et al. Dermoscopic appearance of amelanotic volar melanoma compared with volar angioma. JAMA Dermatol. 2019;155(4):500-501. doi:10.1001/jamadermatol.2018.5487
38. Chang JW. Acral Melanoma: A Unique Disease in Asia. JAMA Dermatol. 2013;149(11):1272–1273. doi:10.1001/jamadermatol.2013.5941
39. Bello DM, Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0.
40. Zell JA, Cinar P, Mobasher M, Ziogas A, Meyskens FL Jr, Anton-Culver H. Survival for patients with invasive cutaneous melanoma among ethnic groups: the effects of socioeconomic status and treatment. J Clin Oncol. 2008 Jan 1;26(1):66-75. doi:10.1200/JCO.2007.12.3604.
41. Hall KH, Rapini RP. Acral Lentiginous Melanoma. 2021 Jul 28. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan–. PMID: 32644539.
42. Rigby HS, Briggs JC. Subungual melanoma: a clinico-pathological study of 24 cases. Br J Plast Surg. 1992 May-Jun;45(4):275-8. doi: 10.1016/0007-1226(92)90051-x
43. Mikhail GR. Hutchinson's sign. J Dermatol Surg Oncol. 1986 May;12(5):519-21. doi: 10.1111/j.1524 4725.1986.tb01943.x
44. DeMartinis NC, Cohen PR. Non-Melanoma-Associated Dyschromia of the Proximal Nail Fold. Cureus. 2016;9;8(12):e922. doi:10.7759/cureus.922.
45. Kawabata Y, Ohara K, Hino H, Tamaki K. Two kinds of Hutchinson's sign, benign and malignant. J Am Acad Dermatol. 2001 Feb;44(2):305-7. doi: 10.1067/mjd.2001.112398
46. Dika E, Patrizi A, Fanti PA, Chessa MA, Reggiani C, Barisani A, Piraccini BM. The Prognosis of Nail Apparatus Melanoma: 20 Years of Experience from a Single Institute. Dermatology. 2016;232(2):177-84. doi: 10.1159/000441293
47. Blessing K., Kernohan N.M., Park K.G.M. Subungual malignant melanoma: Clinicopathological features of 100 cases. Histopathology. 1991;19:425–430. doi: 10.1111/j.1365-2559.1991.tb00232.x.
48. Geizhals S, Lipner SR. Retrospective Case Series on Risk Factors, Diagnosis and Treatment of Pseudomonas aeruginosa Nail In fections. Am J Clin Dermatol. 2020 Apr;21(2):297-302. doi: 10.1007/s40257-019-00476-0.
49. Lee H, Mun JH, Cho S, Park H. Clinical analysis of Pseudomonas aeruginosa-positive and -negative green nail syndrome cases:A single center retrospective analysis. J Dermatol. 2021 Jul;48(7):1073-1076. doi: 10.1111/1346-8138.15832.
50. Glaser DA, Remlinger K. Blue nails and acquired immunodeficiency syndrome: not always associated with azidothymidine use.Cutis. 1996 ;57(4):243-4.
51. Vignes S, Baran R. Yellow nail syndrome:a review. Orphanet J Rare Dis. 2017 Feb 27;12(1):42. doi:10.1186/s13023-017-0594-4.
52. Tokonami A, Ohta R, Tanaka Y, Amano S, Sano C. Pericarditis With Cardiac Tamponade Mimicking Yellow Nail Syndrome in a Patient With Rheumatoid Arthritis and a Paucity of Joint Symptoms. Cureus. 2022 Jan 23;14(1):e21523. doi: 10.7759/cureus.21523.
53. Fukaya T, Kasai H, Saito M, Sasatani Y, Urushibara T, Sakao S. Yellow nail syndrome with massive chylothorax after esophagectomy: A case report. Respir Med Case Rep. 2021 Jun 12;33:101448. doi: 10.1016/j.rmcr.2021.101448.
54. Akcam M, Artan R, Akcam FZ, Yilmaz A. Nail discoloration induced by doxycycline. Pediatr Infect Dis J. 2005 Sep;24(9):845-6. doi: 10.1097/01.inf.0000177283.71692.56
55. Oppel T, Korting HC. Onychodystrophy and its management. Ger Med Sci. 2003;1:Doc02.
56. Kaur R, Kashyap B, Bhalla P. Onychomycosis--epidemiology, diagnosis and management. Indian J Med Microbiol. 2008 Apr-Jun;26(2):108-16
57. Jefferson J, Rich P. Melanonychia. Dermatol Res Pract. 2012;2012:952186. doi: 10.1155/2012/952186.
58. Skowron F, Combemale P, Faisant M, Baran R, Kanitakis J, Dupin M. Functional melanonychia due to involvement of the nail matrix in systemic lupus erythematosus. J Am Acad Dermatol. 2002 Aug;47(2 Suppl):S187-8. doi: 10.1067/mjd.2002.108494.
59. Koch K, Tikly M. Spectrum of cutaneous lupus erythematosus in South Africans with systemic lupus erythematosus. Lupus. 2019 Jul;28(8):1021-1026. doi: 10.1177/0961203319856091
60. Singal A, Bisherwal K. Melanonychia: Etiology, Diagnosis, and Treatment. Indian Dermatol Online J. 2020;11(1):1-11. Published 2020 Jan 13. doi:10.4103/idoj.IDOJ_167_19
61. Richert B, Iorizzo M, Tosti A, André J. Nail bed lichen planus associated with onychopapilloma. 2007; 156(5) 5:1071-1072.
62. Kumar S, Dixit R, Karmakar S, Paul S. Unusual nail pigmentation following cyclophosphamide-containing chemotherapy regimen. Indian J Pharmacol. 2010 Aug;42(4):243-4. doi: 10.4103/0253-7613.68433
63. Daniel CR, Scher RK. Nail changes caused by systemic drugs or ingestants. Dermatol Clin. 1985 Jul;3(3):491-500.
64. André J, Lateur N. Pigmented nail disorders. Dermatol Clin. 2006;24(3):329-39.

65. Baran R, Kechijian P. Longitudinal melanonychia (melanonychia striata): diagnosis and management. J Am Acad Dermatol. 1989 Dec;21(6):1165-75. doi: 10.1016/s0190-9622(89)70324-8

66. Fernandez‐Flores, A. , & Cassarino, D. S. Histopathological diagnosis of acral lentiginous melanoma in early stages. Annals of Diagnostic Pathology, 2017; 26, 64–69. 10.1016/j.anndiagpath.2016.08.005
67. Goettmann-Bonvallot S, André J, Belaich S. Longitudinal melanonychia in children: a clinical and histopathologic study of 40 cases. J Am Acad Dermatol. 1999 Jul;41(1):17-22. doi: 10.1016/s0190-9622(99)70399-3.
68. Yim SH, Kwon IS, Hong D, Jung KE, Lee Y, Seo YJ, Choi CW. Predictor of Subungual Melanoma against Benign Longitudinal Melanonychia: A Retrospective Cohort Study from Korea. Ann Dermatol. 2021 Apr;33(2):147-153. doi: 10.5021/ad.2021.33.2.147.
69. Ko D, Oromendia C, Scher R, Lipner SR. Retrospective single-center study evaluating clinical and dermoscopic features of lon gitudinal melanonychia, ABCDEF criteria, and risk of malignancy. J Am Acad Dermatol. 2019 May;80(5):1272-1283. doi:10.1016/j.jaad.2018.08.033.
70. Levit EK, Kagen MH, Scher RK, Grossman M, Altman E. The ABC rule for clinical detection of subungual melanoma. J Am AcadDermatol. 2000 Feb;42(2 Pt 1):269-74. doi: 10.1016/S0190-9622(00)90137-3.
71. Sawada M, Yokota K, Matsumoto T, Shibata S, Yasue S, Sakakibara A, Kono M, Akiyama M. Proposed classification of longitudinal melanonychia based on clinical and dermoscopic criteria. Int J Dermatol. 2014 May;53(5):581-5. doi: 10.1111/ijd.12001
72. Ezenwa E, Stein JA, Krueger L. Dermoscopic features of neoplasms in skin of color: A review. Int J Womens Dermatol. 2021;7(2):145-151. Published 2021 Jan 19. doi:10.1016/j.ijwd.2020.11.009
73. Braun RP, Thomas L, Dusza SW, Gaide O, Menzies S, Dalle S, Blum A, Argenziano G, Zalaudek I, Kopf A, Rabinovitz H, Oliviero M, Perrinaud A, Cabo H, Pizzichetta M, Pozo L, Langford D, Tanaka M, Saida T, Perusquia Ortiz AM, Kreusch J, De Giorgi V, Piccolo D, Grichnik JM, Kittler H, Puig S, Malvehy J, Seidenari S, Stanganelli I, French L, Marghoob AA. Dermoscopy of acral melanoma: a multicenter study on behalf of the international dermoscopy society. Dermatology. 2013;227(4):373-80. doi:10.1159/000356178.
74. Pehamberger H, Steiner A, Wolff K. In vivo epiluminescence microscopy of pigmented skin lesions. I. Pattern analysis of pigmented skin lesions. J Am Acad Dermatol. 1987;17:571–583. doi: 10.1016/S0190-9622(87)70239-4
75. Kittler H. Evolution of the Clinical, Dermoscopic and Pathologic Diagnosis of Melanoma. Dermatol Pract Concept. 2021 Jul 1;11(Suppl 1):e2021163S. doi: 10.5826/dpc.11S1a163S
76. Lallas, A. , Kyrgidis, A. , Koga, H. , Moscarella, E. , Tschandl, P. , Apalla, Z. , … Argenziano, G. (2015). The BRAAFF checklist: A new dermoscopic algorithm for diagnosing acral melanoma. British Journal of Dermatology, 173(4), 1041–1049.
77. Saida T, Koga H. Dermoscopic patterns of acral melanocytic nevi: their variations, changes, and significance. Arch Dermatol. 2007 Nov;143(11):1423-6. doi: 10.1001/archderm.143.11.1423.
78. Wawrzynkiewicz M, Pastuszczak M, Chlebicki M, Wojas-Pelc A. Acral melanocytic nevi in the Polish population: prevalence, clinical characteristics and dermoscopic patterns. Postepy Dermatol Alergol. 2019 Oct;36(5):581-588. doi: 10.5114/ada.2018.77500.
79. Han B, Hur K, Ohn J, Lim SS, Mun JH. Acral lentiginous melanoma in situ: dermoscopic features and management strategy. SciRep. 2020 Nov 25;10(1):20503. doi: 10.1038/s41598-020-77425-z.
80. Darmawan CC, Jo G, Montenegro SE, Kwak Y, Cheol L, Cho KH, Mun JH. J Am Acad Dermatol. Early detection of acral melanoma: A review of clinical, dermoscopic, histopathologic, and molecular characteristics.2019; 81(3):805-812.
81. Roh D, Shin K, Kim WI, Yang MY, Lee WK, Kim HS, Ko HC, Kim BS, Kim MB. Comparison of dermoscopic features between congenital and acquired acral melanocytic nevi in Korean patients. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020 May;34(5):1004-1009. doi: 10.1111/jdv.16089.
82. Braun RP, Baran R, Saurat JH, Thomas L. Surgical Pearl: Dermoscopy of the free edge of the nail to determine the level of nail plate pigmentation and the location of its probable origin in the proximal or distal nail matrix. J Am Acad Dermatol. 2006 Sep;55(3):512-3. doi: 10.1016/j.jaad.2005.09.032
83. Jellinek N. Nail matrix biopsy of longitudinal melanonychia: diagnostic algorithm including the matrix shave biopsy. J Am Acad Dermatol. 2007 May;56(5):803-10. doi: 10.1016/j.jaad.2006.12.001
84. Starace M, Alessandrini A, Brandi N, Piraccini BM. Use of Nail Dermoscopy in the Management of Melanonychia: Review. Dermatol Pract Concept. 2019 ;9(1):38-43. doi: 10.5826/dpc.0901a10
85. Tosti A, Piraccini BM, de Farias DC. Dealing with melanonychia. Semin Cutan Med Surg. 2009;28(1):49–54.
86. Hirata SH, Yamada S, Enokihara MY, et al. Patterns of nail matrix and bed of longitudinal melanonychia by intraoperative der matoscopy. J Am Acad Dermatol. 2011;65(2):297–303.
87. Xavier-Júnior JC, Munhoz T, Souza V, de Campos EB, Stolf HO, Marques ME. Focal invasiveness in complete histological analyses of a large acral lentiginous melanoma. Diagn Pathol. 2015 Jun 20;10:73. doi: 10.1186/s13000-015-0307-z
88. Montenegro Jaramillo SE, Jo G, Darmawan CC, Lee C, Mun JH. Dermoscopic findings of Spitz nevus on acral volar skin. Indian J Dermatol Venereol Leprol. 2019 Nov-Dec;85(6):629-632. doi: 10.4103/ijdvl.IJDVL_728_18
89. Wiedemeyer K, Guadagno A, Davey J, Brenn T. Acral spitz nevi: A clinicopathologic study of 50 cases with immunohistochemical analysis of P16 and P21 expression. Am J Surg Pathol 2018;42:821-7.
90. Yamaura M, Takata M, Miyazaki A, Saida T. Specific dermoscopy patterns and amplifications of the cyclin D1 gene to define histopathologically unrecognizable early lesions of acral melanoma in situ. Arch. Dermatol. 2005;141:1413–1418. doi: 10.1001/arch derm.141.11.1413
91. Zeng W, Zhang W, Feng J, He X, Lu H. Expression of OPN3 in acral lentiginous melanoma and its associated with clinico histopathologic features and prognosis. Immun Inflamm Dis. 2021 Sep;9(3):840-850. doi: 10.1002/iid3.438
92. Puglisi R, Bellenghi M, Pontecorvi G, Pallante G, Carè A, Mattia G. Biomarkers for Diagnosis, Prognosis and Response to Immunotherapy in Melanoma. Cancers (Basel). 2021 Jun 9;13(12):2875. doi: 10.3390/cancers13122875

1. Kolm I, Hofbauer G, Braun RP. Hautkrebsvorsorge [Early diagnosis of skin cancer]. Ther Umsch. 2010;67(9):439-46. German. doi: 10.1024/0040-5930/a000077
2. Mejbel HA, Torres-Cabala CA, Milton DR, Ivan D, Feldmeyer L, Namikawa K, Nagarajan P, Tetzlaff MT, Curry JL, Ross MI, Hwu WJ, Prieto VG, Aung PP. Prognostic significance of acral lentiginous histologic type in T1 melanoma. Mod Pathol. 2021 Mar;34(3):572-583. doi: 10.1038/s41379-020-0641-x
3. Basurto-Lozada P, Molina-Aguilar C, Castaneda-Garcia C, et al. Acral lentiginous melanoma: Basic facts, biological characteristics and research perspectives of an understudied disease. Pigment Cell Melanoma Res. 2021;34(1):59-71. doi:10.1111/pcmr.12885
4. Hogue L., Harvey V.M. Basal Cell Carcinoma, Squamous Cell Carcinoma, and Cutaneous Melanoma in Skin of Color Patients. Dermatol.Clin. 2019;37(4):519-526.
5. Ozdemir F, Errico MA, Yaman B, Karaarslan I. Acral lentiginous melanoma in the Turkish population and a new dermoscopic clue for the diagnosis. Dermatol Pract Concept. 2018;8(2):140-148. doi:10.5826/dpc.0802a14
6. Elefanti L, Zamuner C, Del Fiore P, Stagni C, Pellegrini S, Dall'Olmo L, Fabozzi A, Senetta R, Ribero S, Salmaso R, Mocellin S, Bassetto F, Cavallin F, Tosi AL, Galuppini F, Dei Tos AP, Menin C, Cappellesso R. The Molecular Landscape of Primary Acral Melanoma: A Multicenter Study of the Italian Melanoma Intergroup (IMI). Int J Mol Sci. 2021 Apr 7;22(8):3826. doi:10.3390/ijms22083826
7. Goydos JS, Shoen SL. Acral Lentiginous Melanoma. Cancer Treat Res. 2016;167:321-9. doi: 10.1007/978-3-319-22539-5_14
8. Saida T, Miyazaki A, Oguchi S, Ishihara Y, Yamazaki Y, Murase S, et al. Significance of dermoscopic patterns in detecting malignant melanoma on acral volar skin: results of a multicenter study in Japan. Arch Dermatol 2004; 140: 1233-1238. doi: 10.1001 / archderm.140.10.1233Fortin P.T.,
9. Freiberg A.A., Rees R., Sondak V.K., Johnson T.M. Malignant melanoma of the foot and ankle. J. Bone Jt. Surg. 1995;77:1396–1403. doi: 10.2106/00004623-199509000-00016
10. Howard MD, Xie C, Wee E, Wolfe R, McLean CA, Kelly JW, Pan Y. Acral lentiginous melanoma: differences in survival compared with other subtypes. Br J Dermatol. 2020 Apr;182(4):1056-1057. doi: 10.1111/bjd.18620.
11. Saida T, Koga H, Uhara H. Key points in dermoscopic differentiation between early acral melanoma and acral nevus. J Dermatol. 2011;38(1):25-34. doi: 10.1111/j.1346-8138.2010.01174.x.
12. Byrd KMWilson DCHoyler SSPeck GL Advanced presentation of melanoma in African Americans. J Am Acad Dermatol 2004;50 (1) 21- 24
13. Phan A, Dalle S, Touzet S, Ronger-Savlé S, Balme B, Thomas L. Dermoscopic features of acral lentiginous melanoma in a large series of 110 cases in a white population. Br J Dermatol. 2010 Apr;162(4):765-71. doi: 10.1111/j.1365-2133.2009.09594.x. Epub 2009 Nov 18. PMID: 19922528.
14. Desai A, Ugorji R, Khachemoune A. Acral melanoma foot lesions. Part 1: epidemiology, aetiology, and molecular pathology. Clin Exp Dermatol. 2017 Dec;42(8):845-848. doi: 10.1111/ced.13243
15. Bradford PT, Goldstein AM, McMaster ML, Tucker MA. Acral lentiginous melanoma: incidence and survival patterns in the United States, 1986-2005. Arch Dermatol. 2009;145(4):427-434. doi:10.1001/archdermatol.2008.609
16. Arrington JH, Reed RJ, Ichinose H, Krementz ET. Plantar lentiginous melanoma: A distinctive variant of human cutaneous malignant melanoma. Am Journal of Surgical Pathology. 1977;1(2):131–143.
17. Durbec F., Martin L., Derancourt C., Grange F. Melanoma of the hand and foot: Epidemiological, prognostic and genetic features. A systematic review. Br. J. Dermatol. 2012;166:727–739. doi: 10.1111/j.1365-2133.2011.10772.x 9-12
18. Markovic SN, Erickson LA, Rao RD, Weenig RH, Pockaj BA, Bardia A, Vachon CM, Schild SE, McWilliams RR, Hand JL, Laman SD, Kottschade LA, Maples WJ, Pittelkow MR, Pulido JS, Cameron JD, Creagan ET; Melanoma Study Group of the Mayo Clinic Cancer Center. Malignant melanoma in the 21st century, part 1: epidemiology, risk factors, screening, prevention, and diagnosis. Mayo Clin Proc. 2007 Mar;82(3):364-80. doi: 10.4065/82.3.364
19. Cabrera, M., Silva, V., Díaz de Medina, DJ, Hoell, B., Guglielmetti, V., Rohmann, K. et al. (1994). Estudio clinico de 113 casos demelanoma maligno . Revista Medica de Chile , 122 ( 8 ), 900–906.
20. Feibleman CE, Stoll H, Maize JC. Melanomas of the palm, sole, and nailbed: a clinicopathologic study. Cancer. 1980 Dec1;46(11):2492-504. doi:10.1002/1097-0142(19801201)46:11<2492::aid cncr2820461130>3.0.co;2-j
21. Minagawa A, Omodaka T, Okuyama R. Melanomas and Mechanical Stress Points on the Plantar Surface of the Foot. N Engl J Med. 2016 Jun 16;374(24):2404-6
22. Sheen, Y.‐S. , Liao, Y.‐H. , Lin, M.‐H. , Chen, J.‐S. , Liau, J.‐Y. , Tseng, Y.‐J., et al. A clinicopathological analysis of 153 acralmelanomas and the relevance of mechanical stress. Scientific Reports, 2017; 7(1), 5564.
23. Gandini S, Sera F, Cattaruzza MS, et al. Meta-analysis of risk factors for cutaneous melanoma: II. Sun exposure. Eur J Cancer. 2005;41:45–60
24. Usher-Smith JA, Emery J, Kassianos AP, Walter FM. Risk prediction models for melanoma: a systematic review. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2014;23:1450–63.
25. Gruber SB, Armstrong BK. Cutaneous and ocular melanoma. In: Schottenfeld D, Fraumeni JF, editors. Cancer Epidemiology and Prevention. New York, NY: Oxford University Press; 2006. pp. 1196–1229.
26. Garibyan L,Fisher DE.How sunlight causes melanoma.Curr Oncol Rep.2010 Sep;12(5):319-26. doi: 10.1007/s11912-010-0119-y.
27. Elder DE, Bastian BC, Cree IA, Massi D, Scolyer RA. The 2018 World Health Organization Classification of Cutaneous, Mucosal, and Uveal Melanoma: Detailed Analysis of 9 Distinct Subtypes Defined by Their Evolutionary Pathway. Arch Pathol Lab Med. 2020 Apr;144(4):500-522. doi: 10.5858/arpa.2019-0561-RA.
28. Fallah, M. , Pukkala, E. , Sundquist, K. , Tretli, S. , Olsen, J. H. , Tryggvadottir, L. , & Hemminki, K. (2014). Familial melanoma by histology and age: Joint data from five Nordic countries. European Journal of Cancer, 2014; 50(6), 1176–1183.10.1016/j.ejca.2013.12.023
29. Liu XK, Li J. Acral lentiginous melanoma. Lancet.2018 Jun 9;391(10137):e21. doi: 10.1016/S0140-6736(18)31071-7.]. Bello DM,Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0
30. Bradford P.T. Skin Cancer in Skin of Color. Dermatol Nurs. 2009:21(4): 170–178].
31. Ward-Peterson M, Acuna JM, Alkhalifah MK, Nasiri AM, Al-Akeel ES, Alkhaldi TM, et al. Association between race/ethnicity and survival of melanoma patients in the United States over 3 decades: A secondary analysis of SEER data. Medicine. 2016;95(17):e3315.
32. Culp MB, Lunsford NB. Melanoma Among Non-Hispanic Black Americans. Prev Chronic Dis 2019;16:180640.
33. Oh TS, Bae EJ, Ro KW, Seo SH, Son SW, Kim IH. Acral Lentiginous Melanoma Developing during Long-standing Atypical Melanosis: Usefulness of Dermoscopy for Detection of Early Acral Melanoma. Ann Dermatol. 2011;23(3):400-404. doi:10.5021/ad.2011.23.3.400
34. Park HS, Cho KH. Acral lentiginous melanoma in situ: a diagnostic and management challenge. Cancers (Basel). 2010;2(2):642-652. doi:10.3390/cancers2020642.
35. Breslow A. Thickness, cross-sectional areas and depth of invasion in the prognosis of cutaneous melanoma. Ann Surg. 1970 Nov;172(5):902-8. doi: 10.1097/00000658-197011000-00017.12885
36. Seyed Jafari SM, Lieberherr S, Cazzaniga S, Beltraminelli H, Haneke E, Hunger RE. Melanoma of the Nail Apparatus: An Analysis of Patients' Survival and Associated Factors. Dermatology. 2022;238(1):156-160. doi: 10.1159/000514493.
37. Liopyris K., Navarrete-Dechent C., Mancebo S.E. et al. Dermoscopic appearance of amelanotic volar melanoma compared with volar angioma. JAMA Dermatol. 2019;155(4):500-501. doi:10.1001/jamadermatol.2018.5487
38. Chang JW. Acral Melanoma: A Unique Disease in Asia. JAMA Dermatol. 2013;149(11):1272–1273. doi:10.1001/jamadermatol.2013.5941
39. Bello DM, Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0.
40. Zell JA, Cinar P, Mobasher M, Ziogas A, Meyskens FL Jr, Anton-Culver H. Survival for patients with invasive cutaneous melanoma among ethnic groups: the effects of socioeconomic status and treatment. J Clin Oncol. 2008 Jan 1;26(1):66-75. doi:10.1200/JCO.2007.12.3604.
41. Hall KH, Rapini RP. Acral Lentiginous Melanoma. 2021 Jul 28. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan–. PMID: 32644539.
42. Rigby HS, Briggs JC. Subungual melanoma: a clinico-pathological study of 24 cases. Br J Plast Surg. 1992 May-Jun;45(4):275-8. doi: 10.1016/0007-1226(92)90051-x
43. Mikhail GR. Hutchinson's sign. J Dermatol Surg Oncol. 1986 May;12(5):519-21. doi: 10.1111/j.1524 4725.1986.tb01943.x
44. DeMartinis NC, Cohen PR. Non-Melanoma-Associated Dyschromia of the Proximal Nail Fold. Cureus. 2016;9;8(12):e922. doi:10.7759/cureus.922.
45. Kawabata Y, Ohara K, Hino H, Tamaki K. Two kinds of Hutchinson's sign, benign and malignant. J Am Acad Dermatol. 2001 Feb;44(2):305-7. doi: 10.1067/mjd.2001.112398
46. Dika E, Patrizi A, Fanti PA, Chessa MA, Reggiani C, Barisani A, Piraccini BM. The Prognosis of Nail Apparatus Melanoma: 20 Years of Experience from a Single Institute. Dermatology. 2016;232(2):177-84. doi: 10.1159/000441293
47. Blessing K., Kernohan N.M., Park K.G.M. Subungual malignant melanoma: Clinicopathological features of 100 cases. Histopathology. 1991;19:425–430. doi: 10.1111/j.1365-2559.1991.tb00232.x.
48. Geizhals S, Lipner SR. Retrospective Case Series on Risk Factors, Diagnosis and Treatment of Pseudomonas aeruginosa Nail In fections. Am J Clin Dermatol. 2020 Apr;21(2):297-302. doi: 10.1007/s40257-019-00476-0.
49. Lee H, Mun JH, Cho S, Park H. Clinical analysis of Pseudomonas aeruginosa-positive and -negative green nail syndrome cases:A single center retrospective analysis. J Dermatol. 2021 Jul;48(7):1073-1076. doi: 10.1111/1346-8138.15832.
50. Glaser DA, Remlinger K. Blue nails and acquired immunodeficiency syndrome: not always associated with azidothymidine use.Cutis. 1996 ;57(4):243-4.
51. Vignes S, Baran R. Yellow nail syndrome:a review. Orphanet J Rare Dis. 2017 Feb 27;12(1):42. doi:10.1186/s13023-017-0594-4.
52. Tokonami A, Ohta R, Tanaka Y, Amano S, Sano C. Pericarditis With Cardiac Tamponade Mimicking Yellow Nail Syndrome in a Patient With Rheumatoid Arthritis and a Paucity of Joint Symptoms. Cureus. 2022 Jan 23;14(1):e21523. doi: 10.7759/cureus.21523.
53. Fukaya T, Kasai H, Saito M, Sasatani Y, Urushibara T, Sakao S. Yellow nail syndrome with massive chylothorax after esophagectomy: A case report. Respir Med Case Rep. 2021 Jun 12;33:101448. doi: 10.1016/j.rmcr.2021.101448.
54. Akcam M, Artan R, Akcam FZ, Yilmaz A. Nail discoloration induced by doxycycline. Pediatr Infect Dis J. 2005 Sep;24(9):845-6. doi: 10.1097/01.inf.0000177283.71692.56
55. Oppel T, Korting HC. Onychodystrophy and its management. Ger Med Sci. 2003;1:Doc02.
56. Kaur R, Kashyap B, Bhalla P. Onychomycosis--epidemiology, diagnosis and management. Indian J Med Microbiol. 2008 Apr-Jun;26(2):108-16
57. Jefferson J, Rich P. Melanonychia. Dermatol Res Pract. 2012;2012:952186. doi: 10.1155/2012/952186.
58. Skowron F, Combemale P, Faisant M, Baran R, Kanitakis J, Dupin M. Functional melanonychia due to involvement of the nail matrix in systemic lupus erythematosus. J Am Acad Dermatol. 2002 Aug;47(2 Suppl):S187-8. doi: 10.1067/mjd.2002.108494.
59. Koch K, Tikly M. Spectrum of cutaneous lupus erythematosus in South Africans with systemic lupus erythematosus. Lupus. 2019 Jul;28(8):1021-1026. doi: 10.1177/0961203319856091
60. Singal A, Bisherwal K. Melanonychia: Etiology, Diagnosis, and Treatment. Indian Dermatol Online J. 2020;11(1):1-11. Published 2020 Jan 13. doi:10.4103/idoj.IDOJ_167_19
61. Richert B, Iorizzo M, Tosti A, André J. Nail bed lichen planus associated with onychopapilloma. 2007; 156(5) 5:1071-1072.
62. Kumar S, Dixit R, Karmakar S, Paul S. Unusual nail pigmentation following cyclophosphamide-containing chemotherapy regimen. Indian J Pharmacol. 2010 Aug;42(4):243-4. doi: 10.4103/0253-7613.68433
63. Daniel CR, Scher RK. Nail changes caused by systemic drugs or ingestants. Dermatol Clin. 1985 Jul;3(3):491-500.
64. André J, Lateur N. Pigmented nail disorders. Dermatol Clin. 2006;24(3):329-39.

65. Baran R, Kechijian P. Longitudinal melanonychia (melanonychia striata): diagnosis and management. J Am Acad Dermatol. 1989 Dec;21(6):1165-75. doi: 10.1016/s0190-9622(89)70324-8

66. Fernandez‐Flores, A. , & Cassarino, D. S. Histopathological diagnosis of acral lentiginous melanoma in early stages. Annals of Diagnostic Pathology, 2017; 26, 64–69. 10.1016/j.anndiagpath.2016.08.005
67. Goettmann-Bonvallot S, André J, Belaich S. Longitudinal melanonychia in children: a clinical and histopathologic study of 40 cases. J Am Acad Dermatol. 1999 Jul;41(1):17-22. doi: 10.1016/s0190-9622(99)70399-3.
68. Yim SH, Kwon IS, Hong D, Jung KE, Lee Y, Seo YJ, Choi CW. Predictor of Subungual Melanoma against Benign Longitudinal Melanonychia: A Retrospective Cohort Study from Korea. Ann Dermatol. 2021 Apr;33(2):147-153. doi: 10.5021/ad.2021.33.2.147.
69. Ko D, Oromendia C, Scher R, Lipner SR. Retrospective single-center study evaluating clinical and dermoscopic features of lon gitudinal melanonychia, ABCDEF criteria, and risk of malignancy. J Am Acad Dermatol. 2019 May;80(5):1272-1283. doi:10.1016/j.jaad.2018.08.033.
70. Levit EK, Kagen MH, Scher RK, Grossman M, Altman E. The ABC rule for clinical detection of subungual melanoma. J Am AcadDermatol. 2000 Feb;42(2 Pt 1):269-74. doi: 10.1016/S0190-9622(00)90137-3.
71. Sawada M, Yokota K, Matsumoto T, Shibata S, Yasue S, Sakakibara A, Kono M, Akiyama M. Proposed classification of longitudinal melanonychia based on clinical and dermoscopic criteria. Int J Dermatol. 2014 May;53(5):581-5. doi: 10.1111/ijd.12001
72. Ezenwa E, Stein JA, Krueger L. Dermoscopic features of neoplasms in skin of color: A review. Int J Womens Dermatol. 2021;7(2):145-151. Published 2021 Jan 19. doi:10.1016/j.ijwd.2020.11.009
73. Braun RP, Thomas L, Dusza SW, Gaide O, Menzies S, Dalle S, Blum A, Argenziano G, Zalaudek I, Kopf A, Rabinovitz H, Oliviero M, Perrinaud A, Cabo H, Pizzichetta M, Pozo L, Langford D, Tanaka M, Saida T, Perusquia Ortiz AM, Kreusch J, De Giorgi V, Piccolo D, Grichnik JM, Kittler H, Puig S, Malvehy J, Seidenari S, Stanganelli I, French L, Marghoob AA. Dermoscopy of acral melanoma: a multicenter study on behalf of the international dermoscopy society. Dermatology. 2013;227(4):373-80. doi:10.1159/000356178.
74. Pehamberger H, Steiner A, Wolff K. In vivo epiluminescence microscopy of pigmented skin lesions. I. Pattern analysis of pigmented skin lesions. J Am Acad Dermatol. 1987;17:571–583. doi: 10.1016/S0190-9622(87)70239-4
75. Kittler H. Evolution of the Clinical, Dermoscopic and Pathologic Diagnosis of Melanoma. Dermatol Pract Concept. 2021 Jul 1;11(Suppl 1):e2021163S. doi: 10.5826/dpc.11S1a163S
76. Lallas, A. , Kyrgidis, A. , Koga, H. , Moscarella, E. , Tschandl, P. , Apalla, Z. , … Argenziano, G. (2015). The BRAAFF checklist: A new dermoscopic algorithm for diagnosing acral melanoma. British Journal of Dermatology, 173(4), 1041–1049.
77. Saida T, Koga H. Dermoscopic patterns of acral melanocytic nevi: their variations, changes, and significance. Arch Dermatol. 2007 Nov;143(11):1423-6. doi: 10.1001/archderm.143.11.1423.
78. Wawrzynkiewicz M, Pastuszczak M, Chlebicki M, Wojas-Pelc A. Acral melanocytic nevi in the Polish population: prevalence, clinical characteristics and dermoscopic patterns. Postepy Dermatol Alergol. 2019 Oct;36(5):581-588. doi: 10.5114/ada.2018.77500.
79. Han B, Hur K, Ohn J, Lim SS, Mun JH. Acral lentiginous melanoma in situ: dermoscopic features and management strategy. SciRep. 2020 Nov 25;10(1):20503. doi: 10.1038/s41598-020-77425-z.
80. Darmawan CC, Jo G, Montenegro SE, Kwak Y, Cheol L, Cho KH, Mun JH. J Am Acad Dermatol. Early detection of acral melanoma: A review of clinical, dermoscopic, histopathologic, and molecular characteristics.2019; 81(3):805-812.
81. Roh D, Shin K, Kim WI, Yang MY, Lee WK, Kim HS, Ko HC, Kim BS, Kim MB. Comparison of dermoscopic features between congenital and acquired acral melanocytic nevi in Korean patients. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020 May;34(5):1004-1009. doi: 10.1111/jdv.16089.
82. Braun RP, Baran R, Saurat JH, Thomas L. Surgical Pearl: Dermoscopy of the free edge of the nail to determine the level of nail plate pigmentation and the location of its probable origin in the proximal or distal nail matrix. J Am Acad Dermatol. 2006 Sep;55(3):512-3. doi: 10.1016/j.jaad.2005.09.032
83. Jellinek N. Nail matrix biopsy of longitudinal melanonychia: diagnostic algorithm including the matrix shave biopsy. J Am Acad Dermatol. 2007 May;56(5):803-10. doi: 10.1016/j.jaad.2006.12.001
84. Starace M, Alessandrini A, Brandi N, Piraccini BM. Use of Nail Dermoscopy in the Management of Melanonychia: Review. Dermatol Pract Concept. 2019 ;9(1):38-43. doi: 10.5826/dpc.0901a10
85. Tosti A, Piraccini BM, de Farias DC. Dealing with melanonychia. Semin Cutan Med Surg. 2009;28(1):49–54.
86. Hirata SH, Yamada S, Enokihara MY, et al. Patterns of nail matrix and bed of longitudinal melanonychia by intraoperative der matoscopy. J Am Acad Dermatol. 2011;65(2):297–303.
87. Xavier-Júnior JC, Munhoz T, Souza V, de Campos EB, Stolf HO, Marques ME. Focal invasiveness in complete histological analyses of a large acral lentiginous melanoma. Diagn Pathol. 2015 Jun 20;10:73. doi: 10.1186/s13000-015-0307-z
88. Montenegro Jaramillo SE, Jo G, Darmawan CC, Lee C, Mun JH. Dermoscopic findings of Spitz nevus on acral volar skin. Indian J Dermatol Venereol Leprol. 2019 Nov-Dec;85(6):629-632. doi: 10.4103/ijdvl.IJDVL_728_18
89. Wiedemeyer K, Guadagno A, Davey J, Brenn T. Acral spitz nevi: A clinicopathologic study of 50 cases with immunohistochemical analysis of P16 and P21 expression. Am J Surg Pathol 2018;42:821-7.
90. Yamaura M, Takata M, Miyazaki A, Saida T. Specific dermoscopy patterns and amplifications of the cyclin D1 gene to define histopathologically unrecognizable early lesions of acral melanoma in situ. Arch. Dermatol. 2005;141:1413–1418. doi: 10.1001/arch derm.141.11.1413
91. Zeng W, Zhang W, Feng J, He X, Lu H. Expression of OPN3 in acral lentiginous melanoma and its associated with clinico histopathologic features and prognosis. Immun Inflamm Dis. 2021 Sep;9(3):840-850. doi: 10.1002/iid3.438
92. Puglisi R, Bellenghi M, Pontecorvi G, Pallante G, Carè A, Mattia G. Biomarkers for Diagnosis, Prognosis and Response to Immunotherapy in Melanoma. Cancers (Basel). 2021 Jun 9;13(12):2875. doi: 10.3390/cancers13122875

Для цитирования

Исупова А.А., Якубов А.С., Исупов Р.В., Ланг М.Ю. Проблемы ранней диагностики акральной лентигинозной меланомы у лиц азиатского происхождения, возможные пути их решения. Здравоохранение Кыргызстана 2022,№1, с. 149-157. https://dx.doi.org/10.51350/zdravkg20223122149

For citation

Isupova A.A., Yakubov A.S., Isupov R.V., Lang M.Yu. Problems of early diagnosis of acral melanoma in asian persons
possible ways to solve them. Health care of Kyrgyzstan 2022, No. 1, pp. 149-157. 
https://dx.doi.org/10.51350/zdravkg20223122149

Цитата үчүн

Исупова А.А., Якубов А.С., Исупов Р.В., Ланг М.Ю. Азиялык адамдардын акралдык меланомасын эрте диагнозунун
маселелери, аларды чечүүнүн мүмкүн жолдору. Кыргызстандын саламаттык сактоо 2022,№1, с. 149-157. https://dx.doi.org/10.51350/zdravkg20223122149

Авторы Исупова А.А., Якубов А.С., Исупов Р.В., Ланг М.Ю.
Ссылка doi.org https://dx.doi.org/10.51350/zdravkg20223122149
Страницы 149-157
Ключевые слова акральная меланома, стопы, кисти, ногтевое ложе, ранняя диагностика, клиническое исследование, дифференциальная диагностика, меланоцитарный невус, дерматоскопия, биопсия, гистологическое исследование, молекулярные исследования
Русский
Об авторах

Исупова Алена Анатольевна, кандидат медицинских наук, старший преподаватель кафедры дерматовенерологии и фтизиатрии Кыргызско-Российского Славянского университета им. Б.Н. Ельцина,
Бишкек, Кыргызская Республика;
Якубов Алмаз Салиевич, врач – онколог, Национального центра онкологии и гематологии, Бишкек, Кыргызская Республика;
Исупов Роман Вячеславович, аспирант, Кыргызско-Российского Славянского университета им. Б.Н.Ельцина, Бишкек,Кыргызская Республика;
Ланг Мария Юрьевна, ординатор кафедры дерматовенерологии и фтизиатрии Кыргызско-Российского славянского университета, Бишкек, Кыргызская Республика.

Полный текст

PDF (RUS)

Список литературы

1. Kolm I, Hofbauer G, Braun RP. Hautkrebsvorsorge [Early diagnosis of skin cancer]. Ther Umsch. 2010;67(9):439-46. German. doi: 10.1024/0040-5930/a000077
2. Mejbel HA, Torres-Cabala CA, Milton DR, Ivan D, Feldmeyer L, Namikawa K, Nagarajan P, Tetzlaff MT, Curry JL, Ross MI, Hwu WJ, Prieto VG, Aung PP. Prognostic significance of acral lentiginous histologic type in T1 melanoma. Mod Pathol. 2021 Mar;34(3):572-583. doi: 10.1038/s41379-020-0641-x
3. Basurto-Lozada P, Molina-Aguilar C, Castaneda-Garcia C, et al. Acral lentiginous melanoma: Basic facts, biological characteristics and research perspectives of an understudied disease. Pigment Cell Melanoma Res. 2021;34(1):59-71. doi:10.1111/pcmr.12885
4. Hogue L., Harvey V.M. Basal Cell Carcinoma, Squamous Cell Carcinoma, and Cutaneous Melanoma in Skin of Color Patients. Dermatol.Clin. 2019;37(4):519-526.
5. Ozdemir F, Errico MA, Yaman B, Karaarslan I. Acral lentiginous melanoma in the Turkish population and a new dermoscopic clue for the diagnosis. Dermatol Pract Concept. 2018;8(2):140-148. doi:10.5826/dpc.0802a14
6. Elefanti L, Zamuner C, Del Fiore P, Stagni C, Pellegrini S, Dall'Olmo L, Fabozzi A, Senetta R, Ribero S, Salmaso R, Mocellin S, Bassetto F, Cavallin F, Tosi AL, Galuppini F, Dei Tos AP, Menin C, Cappellesso R. The Molecular Landscape of Primary Acral Melanoma: A Multicenter Study of the Italian Melanoma Intergroup (IMI). Int J Mol Sci. 2021 Apr 7;22(8):3826. doi:10.3390/ijms22083826
7. Goydos JS, Shoen SL. Acral Lentiginous Melanoma. Cancer Treat Res. 2016;167:321-9. doi: 10.1007/978-3-319-22539-5_14
8. Saida T, Miyazaki A, Oguchi S, Ishihara Y, Yamazaki Y, Murase S, et al. Significance of dermoscopic patterns in detecting malignant melanoma on acral volar skin: results of a multicenter study in Japan. Arch Dermatol 2004; 140: 1233-1238. doi: 10.1001 / archderm.140.10.1233Fortin P.T.,
9. Freiberg A.A., Rees R., Sondak V.K., Johnson T.M. Malignant melanoma of the foot and ankle. J. Bone Jt. Surg. 1995;77:1396–1403. doi: 10.2106/00004623-199509000-00016
10. Howard MD, Xie C, Wee E, Wolfe R, McLean CA, Kelly JW, Pan Y. Acral lentiginous melanoma: differences in survival compared with other subtypes. Br J Dermatol. 2020 Apr;182(4):1056-1057. doi: 10.1111/bjd.18620.
11. Saida T, Koga H, Uhara H. Key points in dermoscopic differentiation between early acral melanoma and acral nevus. J Dermatol. 2011;38(1):25-34. doi: 10.1111/j.1346-8138.2010.01174.x.
12. Byrd KMWilson DCHoyler SSPeck GL Advanced presentation of melanoma in African Americans. J Am Acad Dermatol 2004;50 (1) 21- 24
13. Phan A, Dalle S, Touzet S, Ronger-Savlé S, Balme B, Thomas L. Dermoscopic features of acral lentiginous melanoma in a large series of 110 cases in a white population. Br J Dermatol. 2010 Apr;162(4):765-71. doi: 10.1111/j.1365-2133.2009.09594.x. Epub 2009 Nov 18. PMID: 19922528.
14. Desai A, Ugorji R, Khachemoune A. Acral melanoma foot lesions. Part 1: epidemiology, aetiology, and molecular pathology. Clin Exp Dermatol. 2017 Dec;42(8):845-848. doi: 10.1111/ced.13243
15. Bradford PT, Goldstein AM, McMaster ML, Tucker MA. Acral lentiginous melanoma: incidence and survival patterns in the United States, 1986-2005. Arch Dermatol. 2009;145(4):427-434. doi:10.1001/archdermatol.2008.609
16. Arrington JH, Reed RJ, Ichinose H, Krementz ET. Plantar lentiginous melanoma: A distinctive variant of human cutaneous malignant melanoma. Am Journal of Surgical Pathology. 1977;1(2):131–143.
17. Durbec F., Martin L., Derancourt C., Grange F. Melanoma of the hand and foot: Epidemiological, prognostic and genetic features. A systematic review. Br. J. Dermatol. 2012;166:727–739. doi: 10.1111/j.1365-2133.2011.10772.x 9-12
18. Markovic SN, Erickson LA, Rao RD, Weenig RH, Pockaj BA, Bardia A, Vachon CM, Schild SE, McWilliams RR, Hand JL, Laman SD, Kottschade LA, Maples WJ, Pittelkow MR, Pulido JS, Cameron JD, Creagan ET; Melanoma Study Group of the Mayo Clinic Cancer Center. Malignant melanoma in the 21st century, part 1: epidemiology, risk factors, screening, prevention, and diagnosis. Mayo Clin Proc. 2007 Mar;82(3):364-80. doi: 10.4065/82.3.364
19. Cabrera, M., Silva, V., Díaz de Medina, DJ, Hoell, B., Guglielmetti, V., Rohmann, K. et al. (1994). Estudio clinico de 113 casos demelanoma maligno . Revista Medica de Chile , 122 ( 8 ), 900–906.
20. Feibleman CE, Stoll H, Maize JC. Melanomas of the palm, sole, and nailbed: a clinicopathologic study. Cancer. 1980 Dec1;46(11):2492-504. doi:10.1002/1097-0142(19801201)46:11<2492::aid cncr2820461130>3.0.co;2-j
21. Minagawa A, Omodaka T, Okuyama R. Melanomas and Mechanical Stress Points on the Plantar Surface of the Foot. N Engl J Med. 2016 Jun 16;374(24):2404-6
22. Sheen, Y.‐S. , Liao, Y.‐H. , Lin, M.‐H. , Chen, J.‐S. , Liau, J.‐Y. , Tseng, Y.‐J., et al. A clinicopathological analysis of 153 acralmelanomas and the relevance of mechanical stress. Scientific Reports, 2017; 7(1), 5564.
23. Gandini S, Sera F, Cattaruzza MS, et al. Meta-analysis of risk factors for cutaneous melanoma: II. Sun exposure. Eur J Cancer. 2005;41:45–60
24. Usher-Smith JA, Emery J, Kassianos AP, Walter FM. Risk prediction models for melanoma: a systematic review. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2014;23:1450–63.
25. Gruber SB, Armstrong BK. Cutaneous and ocular melanoma. In: Schottenfeld D, Fraumeni JF, editors. Cancer Epidemiology and Prevention. New York, NY: Oxford University Press; 2006. pp. 1196–1229.
26. Garibyan L,Fisher DE.How sunlight causes melanoma.Curr Oncol Rep.2010 Sep;12(5):319-26. doi: 10.1007/s11912-010-0119-y.
27. Elder DE, Bastian BC, Cree IA, Massi D, Scolyer RA. The 2018 World Health Organization Classification of Cutaneous, Mucosal, and Uveal Melanoma: Detailed Analysis of 9 Distinct Subtypes Defined by Their Evolutionary Pathway. Arch Pathol Lab Med. 2020 Apr;144(4):500-522. doi: 10.5858/arpa.2019-0561-RA.
28. Fallah, M. , Pukkala, E. , Sundquist, K. , Tretli, S. , Olsen, J. H. , Tryggvadottir, L. , & Hemminki, K. (2014). Familial melanoma by histology and age: Joint data from five Nordic countries. European Journal of Cancer, 2014; 50(6), 1176–1183.10.1016/j.ejca.2013.12.023
29. Liu XK, Li J. Acral lentiginous melanoma. Lancet.2018 Jun 9;391(10137):e21. doi: 10.1016/S0140-6736(18)31071-7.]. Bello DM,Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0
30. Bradford P.T. Skin Cancer in Skin of Color. Dermatol Nurs. 2009:21(4): 170–178].
31. Ward-Peterson M, Acuna JM, Alkhalifah MK, Nasiri AM, Al-Akeel ES, Alkhaldi TM, et al. Association between race/ethnicity and survival of melanoma patients in the United States over 3 decades: A secondary analysis of SEER data. Medicine. 2016;95(17):e3315.
32. Culp MB, Lunsford NB. Melanoma Among Non-Hispanic Black Americans. Prev Chronic Dis 2019;16:180640.
33. Oh TS, Bae EJ, Ro KW, Seo SH, Son SW, Kim IH. Acral Lentiginous Melanoma Developing during Long-standing Atypical Melanosis: Usefulness of Dermoscopy for Detection of Early Acral Melanoma. Ann Dermatol. 2011;23(3):400-404. doi:10.5021/ad.2011.23.3.400
34. Park HS, Cho KH. Acral lentiginous melanoma in situ: a diagnostic and management challenge. Cancers (Basel). 2010;2(2):642-652. doi:10.3390/cancers2020642.
35. Breslow A. Thickness, cross-sectional areas and depth of invasion in the prognosis of cutaneous melanoma. Ann Surg. 1970 Nov;172(5):902-8. doi: 10.1097/00000658-197011000-00017.12885
36. Seyed Jafari SM, Lieberherr S, Cazzaniga S, Beltraminelli H, Haneke E, Hunger RE. Melanoma of the Nail Apparatus: An Analysis of Patients' Survival and Associated Factors. Dermatology. 2022;238(1):156-160. doi: 10.1159/000514493.
37. Liopyris K., Navarrete-Dechent C., Mancebo S.E. et al. Dermoscopic appearance of amelanotic volar melanoma compared with volar angioma. JAMA Dermatol. 2019;155(4):500-501. doi:10.1001/jamadermatol.2018.5487
38. Chang JW. Acral Melanoma: A Unique Disease in Asia. JAMA Dermatol. 2013;149(11):1272–1273. doi:10.1001/jamadermatol.2013.5941
39. Bello DM, Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0.
40. Zell JA, Cinar P, Mobasher M, Ziogas A, Meyskens FL Jr, Anton-Culver H. Survival for patients with invasive cutaneous melanoma among ethnic groups: the effects of socioeconomic status and treatment. J Clin Oncol. 2008 Jan 1;26(1):66-75. doi:10.1200/JCO.2007.12.3604.
41. Hall KH, Rapini RP. Acral Lentiginous Melanoma. 2021 Jul 28. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan–. PMID: 32644539.
42. Rigby HS, Briggs JC. Subungual melanoma: a clinico-pathological study of 24 cases. Br J Plast Surg. 1992 May-Jun;45(4):275-8. doi: 10.1016/0007-1226(92)90051-x
43. Mikhail GR. Hutchinson's sign. J Dermatol Surg Oncol. 1986 May;12(5):519-21. doi: 10.1111/j.1524 4725.1986.tb01943.x
44. DeMartinis NC, Cohen PR. Non-Melanoma-Associated Dyschromia of the Proximal Nail Fold. Cureus. 2016;9;8(12):e922. doi:10.7759/cureus.922.
45. Kawabata Y, Ohara K, Hino H, Tamaki K. Two kinds of Hutchinson's sign, benign and malignant. J Am Acad Dermatol. 2001 Feb;44(2):305-7. doi: 10.1067/mjd.2001.112398
46. Dika E, Patrizi A, Fanti PA, Chessa MA, Reggiani C, Barisani A, Piraccini BM. The Prognosis of Nail Apparatus Melanoma: 20 Years of Experience from a Single Institute. Dermatology. 2016;232(2):177-84. doi: 10.1159/000441293
47. Blessing K., Kernohan N.M., Park K.G.M. Subungual malignant melanoma: Clinicopathological features of 100 cases. Histopathology. 1991;19:425–430. doi: 10.1111/j.1365-2559.1991.tb00232.x.
48. Geizhals S, Lipner SR. Retrospective Case Series on Risk Factors, Diagnosis and Treatment of Pseudomonas aeruginosa Nail In fections. Am J Clin Dermatol. 2020 Apr;21(2):297-302. doi: 10.1007/s40257-019-00476-0.
49. Lee H, Mun JH, Cho S, Park H. Clinical analysis of Pseudomonas aeruginosa-positive and -negative green nail syndrome cases:A single center retrospective analysis. J Dermatol. 2021 Jul;48(7):1073-1076. doi: 10.1111/1346-8138.15832.
50. Glaser DA, Remlinger K. Blue nails and acquired immunodeficiency syndrome: not always associated with azidothymidine use.Cutis. 1996 ;57(4):243-4.
51. Vignes S, Baran R. Yellow nail syndrome:a review. Orphanet J Rare Dis. 2017 Feb 27;12(1):42. doi:10.1186/s13023-017-0594-4.
52. Tokonami A, Ohta R, Tanaka Y, Amano S, Sano C. Pericarditis With Cardiac Tamponade Mimicking Yellow Nail Syndrome in a Patient With Rheumatoid Arthritis and a Paucity of Joint Symptoms. Cureus. 2022 Jan 23;14(1):e21523. doi: 10.7759/cureus.21523.
53. Fukaya T, Kasai H, Saito M, Sasatani Y, Urushibara T, Sakao S. Yellow nail syndrome with massive chylothorax after esophagectomy: A case report. Respir Med Case Rep. 2021 Jun 12;33:101448. doi: 10.1016/j.rmcr.2021.101448.
54. Akcam M, Artan R, Akcam FZ, Yilmaz A. Nail discoloration induced by doxycycline. Pediatr Infect Dis J. 2005 Sep;24(9):845-6. doi: 10.1097/01.inf.0000177283.71692.56
55. Oppel T, Korting HC. Onychodystrophy and its management. Ger Med Sci. 2003;1:Doc02.
56. Kaur R, Kashyap B, Bhalla P. Onychomycosis--epidemiology, diagnosis and management. Indian J Med Microbiol. 2008 Apr-Jun;26(2):108-16
57. Jefferson J, Rich P. Melanonychia. Dermatol Res Pract. 2012;2012:952186. doi: 10.1155/2012/952186.
58. Skowron F, Combemale P, Faisant M, Baran R, Kanitakis J, Dupin M. Functional melanonychia due to involvement of the nail matrix in systemic lupus erythematosus. J Am Acad Dermatol. 2002 Aug;47(2 Suppl):S187-8. doi: 10.1067/mjd.2002.108494.
59. Koch K, Tikly M. Spectrum of cutaneous lupus erythematosus in South Africans with systemic lupus erythematosus. Lupus. 2019 Jul;28(8):1021-1026. doi: 10.1177/0961203319856091
60. Singal A, Bisherwal K. Melanonychia: Etiology, Diagnosis, and Treatment. Indian Dermatol Online J. 2020;11(1):1-11. Published 2020 Jan 13. doi:10.4103/idoj.IDOJ_167_19
61. Richert B, Iorizzo M, Tosti A, André J. Nail bed lichen planus associated with onychopapilloma. 2007; 156(5) 5:1071-1072.
62. Kumar S, Dixit R, Karmakar S, Paul S. Unusual nail pigmentation following cyclophosphamide-containing chemotherapy regimen. Indian J Pharmacol. 2010 Aug;42(4):243-4. doi: 10.4103/0253-7613.68433
63. Daniel CR, Scher RK. Nail changes caused by systemic drugs or ingestants. Dermatol Clin. 1985 Jul;3(3):491-500.
64. André J, Lateur N. Pigmented nail disorders. Dermatol Clin. 2006;24(3):329-39.

65. Baran R, Kechijian P. Longitudinal melanonychia (melanonychia striata): diagnosis and management. J Am Acad Dermatol. 1989 Dec;21(6):1165-75. doi: 10.1016/s0190-9622(89)70324-8

66. Fernandez‐Flores, A. , & Cassarino, D. S. Histopathological diagnosis of acral lentiginous melanoma in early stages. Annals of Diagnostic Pathology, 2017; 26, 64–69. 10.1016/j.anndiagpath.2016.08.005
67. Goettmann-Bonvallot S, André J, Belaich S. Longitudinal melanonychia in children: a clinical and histopathologic study of 40 cases. J Am Acad Dermatol. 1999 Jul;41(1):17-22. doi: 10.1016/s0190-9622(99)70399-3.
68. Yim SH, Kwon IS, Hong D, Jung KE, Lee Y, Seo YJ, Choi CW. Predictor of Subungual Melanoma against Benign Longitudinal Melanonychia: A Retrospective Cohort Study from Korea. Ann Dermatol. 2021 Apr;33(2):147-153. doi: 10.5021/ad.2021.33.2.147.
69. Ko D, Oromendia C, Scher R, Lipner SR. Retrospective single-center study evaluating clinical and dermoscopic features of lon gitudinal melanonychia, ABCDEF criteria, and risk of malignancy. J Am Acad Dermatol. 2019 May;80(5):1272-1283. doi:10.1016/j.jaad.2018.08.033.
70. Levit EK, Kagen MH, Scher RK, Grossman M, Altman E. The ABC rule for clinical detection of subungual melanoma. J Am AcadDermatol. 2000 Feb;42(2 Pt 1):269-74. doi: 10.1016/S0190-9622(00)90137-3.
71. Sawada M, Yokota K, Matsumoto T, Shibata S, Yasue S, Sakakibara A, Kono M, Akiyama M. Proposed classification of longitudinal melanonychia based on clinical and dermoscopic criteria. Int J Dermatol. 2014 May;53(5):581-5. doi: 10.1111/ijd.12001
72. Ezenwa E, Stein JA, Krueger L. Dermoscopic features of neoplasms in skin of color: A review. Int J Womens Dermatol. 2021;7(2):145-151. Published 2021 Jan 19. doi:10.1016/j.ijwd.2020.11.009
73. Braun RP, Thomas L, Dusza SW, Gaide O, Menzies S, Dalle S, Blum A, Argenziano G, Zalaudek I, Kopf A, Rabinovitz H, Oliviero M, Perrinaud A, Cabo H, Pizzichetta M, Pozo L, Langford D, Tanaka M, Saida T, Perusquia Ortiz AM, Kreusch J, De Giorgi V, Piccolo D, Grichnik JM, Kittler H, Puig S, Malvehy J, Seidenari S, Stanganelli I, French L, Marghoob AA. Dermoscopy of acral melanoma: a multicenter study on behalf of the international dermoscopy society. Dermatology. 2013;227(4):373-80. doi:10.1159/000356178.
74. Pehamberger H, Steiner A, Wolff K. In vivo epiluminescence microscopy of pigmented skin lesions. I. Pattern analysis of pigmented skin lesions. J Am Acad Dermatol. 1987;17:571–583. doi: 10.1016/S0190-9622(87)70239-4
75. Kittler H. Evolution of the Clinical, Dermoscopic and Pathologic Diagnosis of Melanoma. Dermatol Pract Concept. 2021 Jul 1;11(Suppl 1):e2021163S. doi: 10.5826/dpc.11S1a163S
76. Lallas, A. , Kyrgidis, A. , Koga, H. , Moscarella, E. , Tschandl, P. , Apalla, Z. , … Argenziano, G. (2015). The BRAAFF checklist: A new dermoscopic algorithm for diagnosing acral melanoma. British Journal of Dermatology, 173(4), 1041–1049.
77. Saida T, Koga H. Dermoscopic patterns of acral melanocytic nevi: their variations, changes, and significance. Arch Dermatol. 2007 Nov;143(11):1423-6. doi: 10.1001/archderm.143.11.1423.
78. Wawrzynkiewicz M, Pastuszczak M, Chlebicki M, Wojas-Pelc A. Acral melanocytic nevi in the Polish population: prevalence, clinical characteristics and dermoscopic patterns. Postepy Dermatol Alergol. 2019 Oct;36(5):581-588. doi: 10.5114/ada.2018.77500.
79. Han B, Hur K, Ohn J, Lim SS, Mun JH. Acral lentiginous melanoma in situ: dermoscopic features and management strategy. SciRep. 2020 Nov 25;10(1):20503. doi: 10.1038/s41598-020-77425-z.
80. Darmawan CC, Jo G, Montenegro SE, Kwak Y, Cheol L, Cho KH, Mun JH. J Am Acad Dermatol. Early detection of acral melanoma: A review of clinical, dermoscopic, histopathologic, and molecular characteristics.2019; 81(3):805-812.
81. Roh D, Shin K, Kim WI, Yang MY, Lee WK, Kim HS, Ko HC, Kim BS, Kim MB. Comparison of dermoscopic features between congenital and acquired acral melanocytic nevi in Korean patients. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020 May;34(5):1004-1009. doi: 10.1111/jdv.16089.
82. Braun RP, Baran R, Saurat JH, Thomas L. Surgical Pearl: Dermoscopy of the free edge of the nail to determine the level of nail plate pigmentation and the location of its probable origin in the proximal or distal nail matrix. J Am Acad Dermatol. 2006 Sep;55(3):512-3. doi: 10.1016/j.jaad.2005.09.032
83. Jellinek N. Nail matrix biopsy of longitudinal melanonychia: diagnostic algorithm including the matrix shave biopsy. J Am Acad Dermatol. 2007 May;56(5):803-10. doi: 10.1016/j.jaad.2006.12.001
84. Starace M, Alessandrini A, Brandi N, Piraccini BM. Use of Nail Dermoscopy in the Management of Melanonychia: Review. Dermatol Pract Concept. 2019 ;9(1):38-43. doi: 10.5826/dpc.0901a10
85. Tosti A, Piraccini BM, de Farias DC. Dealing with melanonychia. Semin Cutan Med Surg. 2009;28(1):49–54.
86. Hirata SH, Yamada S, Enokihara MY, et al. Patterns of nail matrix and bed of longitudinal melanonychia by intraoperative der matoscopy. J Am Acad Dermatol. 2011;65(2):297–303.
87. Xavier-Júnior JC, Munhoz T, Souza V, de Campos EB, Stolf HO, Marques ME. Focal invasiveness in complete histological analyses of a large acral lentiginous melanoma. Diagn Pathol. 2015 Jun 20;10:73. doi: 10.1186/s13000-015-0307-z
88. Montenegro Jaramillo SE, Jo G, Darmawan CC, Lee C, Mun JH. Dermoscopic findings of Spitz nevus on acral volar skin. Indian J Dermatol Venereol Leprol. 2019 Nov-Dec;85(6):629-632. doi: 10.4103/ijdvl.IJDVL_728_18
89. Wiedemeyer K, Guadagno A, Davey J, Brenn T. Acral spitz nevi: A clinicopathologic study of 50 cases with immunohistochemical analysis of P16 and P21 expression. Am J Surg Pathol 2018;42:821-7.
90. Yamaura M, Takata M, Miyazaki A, Saida T. Specific dermoscopy patterns and amplifications of the cyclin D1 gene to define histopathologically unrecognizable early lesions of acral melanoma in situ. Arch. Dermatol. 2005;141:1413–1418. doi: 10.1001/arch derm.141.11.1413
91. Zeng W, Zhang W, Feng J, He X, Lu H. Expression of OPN3 in acral lentiginous melanoma and its associated with clinico histopathologic features and prognosis. Immun Inflamm Dis. 2021 Sep;9(3):840-850. doi: 10.1002/iid3.438
92. Puglisi R, Bellenghi M, Pontecorvi G, Pallante G, Carè A, Mattia G. Biomarkers for Diagnosis, Prognosis and Response to Immunotherapy in Melanoma. Cancers (Basel). 2021 Jun 9;13(12):2875. doi: 10.3390/cancers13122875

 

Для цитирования

Исупова А.А., Якубов А.С., Исупов Р.В., Ланг М.Ю. Проблемы ранней диагностики акральной лентигинозной меланомы у лиц азиатского происхождения, возможные пути их решения. Здравоохранение Кыргызстана 2022,№1, с. 149-157. https://dx.doi.org/10.51350/zdravkg20223122149

Английский
About authors

Isupova Alena Anatolyevna, Candidate of Medical Sciences, B.N. Yeltsin Kyrgyz-Russian Slavonic University, Senior Lecturer of the Department of Dermatovenerology and Phthisiology, Bishkek, Kyrgyz Republic;
Yakubov Almaz Salievich, oncologist, National Center Oncology and Hematology, Bishkek, Kyrgyz Republic;
Isupov Roman Alekeslavovich, PhD student, B.N. Yeltsin Kyrgyz-Russian Slavonic University, Bishkek, Kyrgyz Republic;
Lang Maria Yuryevna, Resident, Department of Dermatovenerology and Phthisiology, Kyrgyz-Russian Slavic University, Bishkek, Kyrgyz Republic.

Full text

PDF (RUS)

References

1. Kolm I, Hofbauer G, Braun RP. Hautkrebsvorsorge [Early diagnosis of skin cancer]. Ther Umsch. 2010;67(9):439-46. German. doi: 10.1024/0040-5930/a000077
2. Mejbel HA, Torres-Cabala CA, Milton DR, Ivan D, Feldmeyer L, Namikawa K, Nagarajan P, Tetzlaff MT, Curry JL, Ross MI, Hwu WJ, Prieto VG, Aung PP. Prognostic significance of acral lentiginous histologic type in T1 melanoma. Mod Pathol. 2021 Mar;34(3):572-583. doi: 10.1038/s41379-020-0641-x
3. Basurto-Lozada P, Molina-Aguilar C, Castaneda-Garcia C, et al. Acral lentiginous melanoma: Basic facts, biological characteristics and research perspectives of an understudied disease. Pigment Cell Melanoma Res. 2021;34(1):59-71. doi:10.1111/pcmr.12885
4. Hogue L., Harvey V.M. Basal Cell Carcinoma, Squamous Cell Carcinoma, and Cutaneous Melanoma in Skin of Color Patients. Dermatol.Clin. 2019;37(4):519-526.
5. Ozdemir F, Errico MA, Yaman B, Karaarslan I. Acral lentiginous melanoma in the Turkish population and a new dermoscopic clue for the diagnosis. Dermatol Pract Concept. 2018;8(2):140-148. doi:10.5826/dpc.0802a14
6. Elefanti L, Zamuner C, Del Fiore P, Stagni C, Pellegrini S, Dall'Olmo L, Fabozzi A, Senetta R, Ribero S, Salmaso R, Mocellin S, Bassetto F, Cavallin F, Tosi AL, Galuppini F, Dei Tos AP, Menin C, Cappellesso R. The Molecular Landscape of Primary Acral Melanoma: A Multicenter Study of the Italian Melanoma Intergroup (IMI). Int J Mol Sci. 2021 Apr 7;22(8):3826. doi:10.3390/ijms22083826
7. Goydos JS, Shoen SL. Acral Lentiginous Melanoma. Cancer Treat Res. 2016;167:321-9. doi: 10.1007/978-3-319-22539-5_14
8. Saida T, Miyazaki A, Oguchi S, Ishihara Y, Yamazaki Y, Murase S, et al. Significance of dermoscopic patterns in detecting malignant melanoma on acral volar skin: results of a multicenter study in Japan. Arch Dermatol 2004; 140: 1233-1238. doi: 10.1001 / archderm.140.10.1233Fortin P.T.,
9. Freiberg A.A., Rees R., Sondak V.K., Johnson T.M. Malignant melanoma of the foot and ankle. J. Bone Jt. Surg. 1995;77:1396–1403. doi: 10.2106/00004623-199509000-00016
10. Howard MD, Xie C, Wee E, Wolfe R, McLean CA, Kelly JW, Pan Y. Acral lentiginous melanoma: differences in survival compared with other subtypes. Br J Dermatol. 2020 Apr;182(4):1056-1057. doi: 10.1111/bjd.18620.
11. Saida T, Koga H, Uhara H. Key points in dermoscopic differentiation between early acral melanoma and acral nevus. J Dermatol. 2011;38(1):25-34. doi: 10.1111/j.1346-8138.2010.01174.x.
12. Byrd KMWilson DCHoyler SSPeck GL Advanced presentation of melanoma in African Americans. J Am Acad Dermatol 2004;50 (1) 21- 24
13. Phan A, Dalle S, Touzet S, Ronger-Savlé S, Balme B, Thomas L. Dermoscopic features of acral lentiginous melanoma in a large series of 110 cases in a white population. Br J Dermatol. 2010 Apr;162(4):765-71. doi: 10.1111/j.1365-2133.2009.09594.x. Epub 2009 Nov 18. PMID: 19922528.
14. Desai A, Ugorji R, Khachemoune A. Acral melanoma foot lesions. Part 1: epidemiology, aetiology, and molecular pathology. Clin Exp Dermatol. 2017 Dec;42(8):845-848. doi: 10.1111/ced.13243
15. Bradford PT, Goldstein AM, McMaster ML, Tucker MA. Acral lentiginous melanoma: incidence and survival patterns in the United States, 1986-2005. Arch Dermatol. 2009;145(4):427-434. doi:10.1001/archdermatol.2008.609
16. Arrington JH, Reed RJ, Ichinose H, Krementz ET. Plantar lentiginous melanoma: A distinctive variant of human cutaneous malignant melanoma. Am Journal of Surgical Pathology. 1977;1(2):131–143.
17. Durbec F., Martin L., Derancourt C., Grange F. Melanoma of the hand and foot: Epidemiological, prognostic and genetic features. A systematic review. Br. J. Dermatol. 2012;166:727–739. doi: 10.1111/j.1365-2133.2011.10772.x 9-12
18. Markovic SN, Erickson LA, Rao RD, Weenig RH, Pockaj BA, Bardia A, Vachon CM, Schild SE, McWilliams RR, Hand JL, Laman SD, Kottschade LA, Maples WJ, Pittelkow MR, Pulido JS, Cameron JD, Creagan ET; Melanoma Study Group of the Mayo Clinic Cancer Center. Malignant melanoma in the 21st century, part 1: epidemiology, risk factors, screening, prevention, and diagnosis. Mayo Clin Proc. 2007 Mar;82(3):364-80. doi: 10.4065/82.3.364
19. Cabrera, M., Silva, V., Díaz de Medina, DJ, Hoell, B., Guglielmetti, V., Rohmann, K. et al. (1994). Estudio clinico de 113 casos demelanoma maligno . Revista Medica de Chile , 122 ( 8 ), 900–906.
20. Feibleman CE, Stoll H, Maize JC. Melanomas of the palm, sole, and nailbed: a clinicopathologic study. Cancer. 1980 Dec1;46(11):2492-504. doi:10.1002/1097-0142(19801201)46:11<2492::aid cncr2820461130>3.0.co;2-j
21. Minagawa A, Omodaka T, Okuyama R. Melanomas and Mechanical Stress Points on the Plantar Surface of the Foot. N Engl J Med. 2016 Jun 16;374(24):2404-6
22. Sheen, Y.‐S. , Liao, Y.‐H. , Lin, M.‐H. , Chen, J.‐S. , Liau, J.‐Y. , Tseng, Y.‐J., et al. A clinicopathological analysis of 153 acralmelanomas and the relevance of mechanical stress. Scientific Reports, 2017; 7(1), 5564.
23. Gandini S, Sera F, Cattaruzza MS, et al. Meta-analysis of risk factors for cutaneous melanoma: II. Sun exposure. Eur J Cancer. 2005;41:45–60
24. Usher-Smith JA, Emery J, Kassianos AP, Walter FM. Risk prediction models for melanoma: a systematic review. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2014;23:1450–63.
25. Gruber SB, Armstrong BK. Cutaneous and ocular melanoma. In: Schottenfeld D, Fraumeni JF, editors. Cancer Epidemiology and Prevention. New York, NY: Oxford University Press; 2006. pp. 1196–1229.
26. Garibyan L,Fisher DE.How sunlight causes melanoma.Curr Oncol Rep.2010 Sep;12(5):319-26. doi: 10.1007/s11912-010-0119-y.
27. Elder DE, Bastian BC, Cree IA, Massi D, Scolyer RA. The 2018 World Health Organization Classification of Cutaneous, Mucosal, and Uveal Melanoma: Detailed Analysis of 9 Distinct Subtypes Defined by Their Evolutionary Pathway. Arch Pathol Lab Med. 2020 Apr;144(4):500-522. doi: 10.5858/arpa.2019-0561-RA.
28. Fallah, M. , Pukkala, E. , Sundquist, K. , Tretli, S. , Olsen, J. H. , Tryggvadottir, L. , & Hemminki, K. (2014). Familial melanoma by histology and age: Joint data from five Nordic countries. European Journal of Cancer, 2014; 50(6), 1176–1183.10.1016/j.ejca.2013.12.023
29. Liu XK, Li J. Acral lentiginous melanoma. Lancet.2018 Jun 9;391(10137):e21. doi: 10.1016/S0140-6736(18)31071-7.]. Bello DM,Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0
30. Bradford P.T. Skin Cancer in Skin of Color. Dermatol Nurs. 2009:21(4): 170–178].
31. Ward-Peterson M, Acuna JM, Alkhalifah MK, Nasiri AM, Al-Akeel ES, Alkhaldi TM, et al. Association between race/ethnicity and survival of melanoma patients in the United States over 3 decades: A secondary analysis of SEER data. Medicine. 2016;95(17):e3315.
32. Culp MB, Lunsford NB. Melanoma Among Non-Hispanic Black Americans. Prev Chronic Dis 2019;16:180640.
33. Oh TS, Bae EJ, Ro KW, Seo SH, Son SW, Kim IH. Acral Lentiginous Melanoma Developing during Long-standing Atypical Melanosis: Usefulness of Dermoscopy for Detection of Early Acral Melanoma. Ann Dermatol. 2011;23(3):400-404. doi:10.5021/ad.2011.23.3.400
34. Park HS, Cho KH. Acral lentiginous melanoma in situ: a diagnostic and management challenge. Cancers (Basel). 2010;2(2):642-652. doi:10.3390/cancers2020642.
35. Breslow A. Thickness, cross-sectional areas and depth of invasion in the prognosis of cutaneous melanoma. Ann Surg. 1970 Nov;172(5):902-8. doi: 10.1097/00000658-197011000-00017.12885
36. Seyed Jafari SM, Lieberherr S, Cazzaniga S, Beltraminelli H, Haneke E, Hunger RE. Melanoma of the Nail Apparatus: An Analysis of Patients' Survival and Associated Factors. Dermatology. 2022;238(1):156-160. doi: 10.1159/000514493.
37. Liopyris K., Navarrete-Dechent C., Mancebo S.E. et al. Dermoscopic appearance of amelanotic volar melanoma compared with volar angioma. JAMA Dermatol. 2019;155(4):500-501. doi:10.1001/jamadermatol.2018.5487
38. Chang JW. Acral Melanoma: A Unique Disease in Asia. JAMA Dermatol. 2013;149(11):1272–1273. doi:10.1001/jamadermatol.2013.5941
39. Bello DM, Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0.
40. Zell JA, Cinar P, Mobasher M, Ziogas A, Meyskens FL Jr, Anton-Culver H. Survival for patients with invasive cutaneous melanoma among ethnic groups: the effects of socioeconomic status and treatment. J Clin Oncol. 2008 Jan 1;26(1):66-75. doi:10.1200/JCO.2007.12.3604.
41. Hall KH, Rapini RP. Acral Lentiginous Melanoma. 2021 Jul 28. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan–. PMID: 32644539.
42. Rigby HS, Briggs JC. Subungual melanoma: a clinico-pathological study of 24 cases. Br J Plast Surg. 1992 May-Jun;45(4):275-8. doi: 10.1016/0007-1226(92)90051-x
43. Mikhail GR. Hutchinson's sign. J Dermatol Surg Oncol. 1986 May;12(5):519-21. doi: 10.1111/j.1524 4725.1986.tb01943.x
44. DeMartinis NC, Cohen PR. Non-Melanoma-Associated Dyschromia of the Proximal Nail Fold. Cureus. 2016;9;8(12):e922. doi:10.7759/cureus.922.
45. Kawabata Y, Ohara K, Hino H, Tamaki K. Two kinds of Hutchinson's sign, benign and malignant. J Am Acad Dermatol. 2001 Feb;44(2):305-7. doi: 10.1067/mjd.2001.112398
46. Dika E, Patrizi A, Fanti PA, Chessa MA, Reggiani C, Barisani A, Piraccini BM. The Prognosis of Nail Apparatus Melanoma: 20 Years of Experience from a Single Institute. Dermatology. 2016;232(2):177-84. doi: 10.1159/000441293
47. Blessing K., Kernohan N.M., Park K.G.M. Subungual malignant melanoma: Clinicopathological features of 100 cases. Histopathology. 1991;19:425–430. doi: 10.1111/j.1365-2559.1991.tb00232.x.
48. Geizhals S, Lipner SR. Retrospective Case Series on Risk Factors, Diagnosis and Treatment of Pseudomonas aeruginosa Nail In fections. Am J Clin Dermatol. 2020 Apr;21(2):297-302. doi: 10.1007/s40257-019-00476-0.
49. Lee H, Mun JH, Cho S, Park H. Clinical analysis of Pseudomonas aeruginosa-positive and -negative green nail syndrome cases:A single center retrospective analysis. J Dermatol. 2021 Jul;48(7):1073-1076. doi: 10.1111/1346-8138.15832.
50. Glaser DA, Remlinger K. Blue nails and acquired immunodeficiency syndrome: not always associated with azidothymidine use.Cutis. 1996 ;57(4):243-4.
51. Vignes S, Baran R. Yellow nail syndrome:a review. Orphanet J Rare Dis. 2017 Feb 27;12(1):42. doi:10.1186/s13023-017-0594-4.
52. Tokonami A, Ohta R, Tanaka Y, Amano S, Sano C. Pericarditis With Cardiac Tamponade Mimicking Yellow Nail Syndrome in a Patient With Rheumatoid Arthritis and a Paucity of Joint Symptoms. Cureus. 2022 Jan 23;14(1):e21523. doi: 10.7759/cureus.21523.
53. Fukaya T, Kasai H, Saito M, Sasatani Y, Urushibara T, Sakao S. Yellow nail syndrome with massive chylothorax after esophagectomy: A case report. Respir Med Case Rep. 2021 Jun 12;33:101448. doi: 10.1016/j.rmcr.2021.101448.
54. Akcam M, Artan R, Akcam FZ, Yilmaz A. Nail discoloration induced by doxycycline. Pediatr Infect Dis J. 2005 Sep;24(9):845-6. doi: 10.1097/01.inf.0000177283.71692.56
55. Oppel T, Korting HC. Onychodystrophy and its management. Ger Med Sci. 2003;1:Doc02.
56. Kaur R, Kashyap B, Bhalla P. Onychomycosis--epidemiology, diagnosis and management. Indian J Med Microbiol. 2008 Apr-Jun;26(2):108-16
57. Jefferson J, Rich P. Melanonychia. Dermatol Res Pract. 2012;2012:952186. doi: 10.1155/2012/952186.
58. Skowron F, Combemale P, Faisant M, Baran R, Kanitakis J, Dupin M. Functional melanonychia due to involvement of the nail matrix in systemic lupus erythematosus. J Am Acad Dermatol. 2002 Aug;47(2 Suppl):S187-8. doi: 10.1067/mjd.2002.108494.
59. Koch K, Tikly M. Spectrum of cutaneous lupus erythematosus in South Africans with systemic lupus erythematosus. Lupus. 2019 Jul;28(8):1021-1026. doi: 10.1177/0961203319856091
60. Singal A, Bisherwal K. Melanonychia: Etiology, Diagnosis, and Treatment. Indian Dermatol Online J. 2020;11(1):1-11. Published 2020 Jan 13. doi:10.4103/idoj.IDOJ_167_19
61. Richert B, Iorizzo M, Tosti A, André J. Nail bed lichen planus associated with onychopapilloma. 2007; 156(5) 5:1071-1072.
62. Kumar S, Dixit R, Karmakar S, Paul S. Unusual nail pigmentation following cyclophosphamide-containing chemotherapy regimen. Indian J Pharmacol. 2010 Aug;42(4):243-4. doi: 10.4103/0253-7613.68433
63. Daniel CR, Scher RK. Nail changes caused by systemic drugs or ingestants. Dermatol Clin. 1985 Jul;3(3):491-500.
64. André J, Lateur N. Pigmented nail disorders. Dermatol Clin. 2006;24(3):329-39.

65. Baran R, Kechijian P. Longitudinal melanonychia (melanonychia striata): diagnosis and management. J Am Acad Dermatol. 1989 Dec;21(6):1165-75. doi: 10.1016/s0190-9622(89)70324-8

66. Fernandez‐Flores, A. , & Cassarino, D. S. Histopathological diagnosis of acral lentiginous melanoma in early stages. Annals of Diagnostic Pathology, 2017; 26, 64–69. 10.1016/j.anndiagpath.2016.08.005
67. Goettmann-Bonvallot S, André J, Belaich S. Longitudinal melanonychia in children: a clinical and histopathologic study of 40 cases. J Am Acad Dermatol. 1999 Jul;41(1):17-22. doi: 10.1016/s0190-9622(99)70399-3.
68. Yim SH, Kwon IS, Hong D, Jung KE, Lee Y, Seo YJ, Choi CW. Predictor of Subungual Melanoma against Benign Longitudinal Melanonychia: A Retrospective Cohort Study from Korea. Ann Dermatol. 2021 Apr;33(2):147-153. doi: 10.5021/ad.2021.33.2.147.
69. Ko D, Oromendia C, Scher R, Lipner SR. Retrospective single-center study evaluating clinical and dermoscopic features of lon gitudinal melanonychia, ABCDEF criteria, and risk of malignancy. J Am Acad Dermatol. 2019 May;80(5):1272-1283. doi:10.1016/j.jaad.2018.08.033.
70. Levit EK, Kagen MH, Scher RK, Grossman M, Altman E. The ABC rule for clinical detection of subungual melanoma. J Am AcadDermatol. 2000 Feb;42(2 Pt 1):269-74. doi: 10.1016/S0190-9622(00)90137-3.
71. Sawada M, Yokota K, Matsumoto T, Shibata S, Yasue S, Sakakibara A, Kono M, Akiyama M. Proposed classification of longitudinal melanonychia based on clinical and dermoscopic criteria. Int J Dermatol. 2014 May;53(5):581-5. doi: 10.1111/ijd.12001
72. Ezenwa E, Stein JA, Krueger L. Dermoscopic features of neoplasms in skin of color: A review. Int J Womens Dermatol. 2021;7(2):145-151. Published 2021 Jan 19. doi:10.1016/j.ijwd.2020.11.009
73. Braun RP, Thomas L, Dusza SW, Gaide O, Menzies S, Dalle S, Blum A, Argenziano G, Zalaudek I, Kopf A, Rabinovitz H, Oliviero M, Perrinaud A, Cabo H, Pizzichetta M, Pozo L, Langford D, Tanaka M, Saida T, Perusquia Ortiz AM, Kreusch J, De Giorgi V, Piccolo D, Grichnik JM, Kittler H, Puig S, Malvehy J, Seidenari S, Stanganelli I, French L, Marghoob AA. Dermoscopy of acral melanoma: a multicenter study on behalf of the international dermoscopy society. Dermatology. 2013;227(4):373-80. doi:10.1159/000356178.
74. Pehamberger H, Steiner A, Wolff K. In vivo epiluminescence microscopy of pigmented skin lesions. I. Pattern analysis of pigmented skin lesions. J Am Acad Dermatol. 1987;17:571–583. doi: 10.1016/S0190-9622(87)70239-4
75. Kittler H. Evolution of the Clinical, Dermoscopic and Pathologic Diagnosis of Melanoma. Dermatol Pract Concept. 2021 Jul 1;11(Suppl 1):e2021163S. doi: 10.5826/dpc.11S1a163S
76. Lallas, A. , Kyrgidis, A. , Koga, H. , Moscarella, E. , Tschandl, P. , Apalla, Z. , … Argenziano, G. (2015). The BRAAFF checklist: A new dermoscopic algorithm for diagnosing acral melanoma. British Journal of Dermatology, 173(4), 1041–1049.
77. Saida T, Koga H. Dermoscopic patterns of acral melanocytic nevi: their variations, changes, and significance. Arch Dermatol. 2007 Nov;143(11):1423-6. doi: 10.1001/archderm.143.11.1423.
78. Wawrzynkiewicz M, Pastuszczak M, Chlebicki M, Wojas-Pelc A. Acral melanocytic nevi in the Polish population: prevalence, clinical characteristics and dermoscopic patterns. Postepy Dermatol Alergol. 2019 Oct;36(5):581-588. doi: 10.5114/ada.2018.77500.
79. Han B, Hur K, Ohn J, Lim SS, Mun JH. Acral lentiginous melanoma in situ: dermoscopic features and management strategy. SciRep. 2020 Nov 25;10(1):20503. doi: 10.1038/s41598-020-77425-z.
80. Darmawan CC, Jo G, Montenegro SE, Kwak Y, Cheol L, Cho KH, Mun JH. J Am Acad Dermatol. Early detection of acral melanoma: A review of clinical, dermoscopic, histopathologic, and molecular characteristics.2019; 81(3):805-812.
81. Roh D, Shin K, Kim WI, Yang MY, Lee WK, Kim HS, Ko HC, Kim BS, Kim MB. Comparison of dermoscopic features between congenital and acquired acral melanocytic nevi in Korean patients. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020 May;34(5):1004-1009. doi: 10.1111/jdv.16089.
82. Braun RP, Baran R, Saurat JH, Thomas L. Surgical Pearl: Dermoscopy of the free edge of the nail to determine the level of nail plate pigmentation and the location of its probable origin in the proximal or distal nail matrix. J Am Acad Dermatol. 2006 Sep;55(3):512-3. doi: 10.1016/j.jaad.2005.09.032
83. Jellinek N. Nail matrix biopsy of longitudinal melanonychia: diagnostic algorithm including the matrix shave biopsy. J Am Acad Dermatol. 2007 May;56(5):803-10. doi: 10.1016/j.jaad.2006.12.001
84. Starace M, Alessandrini A, Brandi N, Piraccini BM. Use of Nail Dermoscopy in the Management of Melanonychia: Review. Dermatol Pract Concept. 2019 ;9(1):38-43. doi: 10.5826/dpc.0901a10
85. Tosti A, Piraccini BM, de Farias DC. Dealing with melanonychia. Semin Cutan Med Surg. 2009;28(1):49–54.
86. Hirata SH, Yamada S, Enokihara MY, et al. Patterns of nail matrix and bed of longitudinal melanonychia by intraoperative der matoscopy. J Am Acad Dermatol. 2011;65(2):297–303.
87. Xavier-Júnior JC, Munhoz T, Souza V, de Campos EB, Stolf HO, Marques ME. Focal invasiveness in complete histological analyses of a large acral lentiginous melanoma. Diagn Pathol. 2015 Jun 20;10:73. doi: 10.1186/s13000-015-0307-z
88. Montenegro Jaramillo SE, Jo G, Darmawan CC, Lee C, Mun JH. Dermoscopic findings of Spitz nevus on acral volar skin. Indian J Dermatol Venereol Leprol. 2019 Nov-Dec;85(6):629-632. doi: 10.4103/ijdvl.IJDVL_728_18
89. Wiedemeyer K, Guadagno A, Davey J, Brenn T. Acral spitz nevi: A clinicopathologic study of 50 cases with immunohistochemical analysis of P16 and P21 expression. Am J Surg Pathol 2018;42:821-7.
90. Yamaura M, Takata M, Miyazaki A, Saida T. Specific dermoscopy patterns and amplifications of the cyclin D1 gene to define histopathologically unrecognizable early lesions of acral melanoma in situ. Arch. Dermatol. 2005;141:1413–1418. doi: 10.1001/arch derm.141.11.1413
91. Zeng W, Zhang W, Feng J, He X, Lu H. Expression of OPN3 in acral lentiginous melanoma and its associated with clinico histopathologic features and prognosis. Immun Inflamm Dis. 2021 Sep;9(3):840-850. doi: 10.1002/iid3.438
92. Puglisi R, Bellenghi M, Pontecorvi G, Pallante G, Carè A, Mattia G. Biomarkers for Diagnosis, Prognosis and Response to Immunotherapy in Melanoma. Cancers (Basel). 2021 Jun 9;13(12):2875. doi: 10.3390/cancers13122875

For citation

Isupova A.A., Yakubov A.S., Isupov R.V., Lang M.Yu. Problems of early diagnosis of acral melanoma in asian persons
possible ways to solve them. Health care of Kyrgyzstan 2022, No. 1, pp. 149-157. 
https://dx.doi.org/10.51350/zdravkg20223122149

Кыргызский
Авторлор жөнүндө

Исупова Алена Анатольевна, медицина илимдеринин кандидаты, Б.Н. Ельцин атындагы Кыргыз-Орус Славян университети, тери-венерология жана фтизиатрия кафедрасынын ага окутуучусу, Бишкек, Кыргыз Республикасы;

Якубов Алмаз Салиевич, Улуттук онкология жана гематология борборунун онкологу, Бишкек шаары, Кыргыз Республикасы;

Исупов Роман Алекеславович, аспирант, Б.Н. Ельцин атындагы Кыргыз-Орус Славян университети, Бишкек, Кыргыз Республикасы;

Ланг Мария Юрьевна, Б.Н. Ельцин атындагы Кыргыз-Орус Славян университети тери-венерология жана фтизиатрия кафедрасынын ординатору, Бишкек, Кыргыз Республикасы.

Толук текст

PDF (RUS)

Шилтемелер

1. Kolm I, Hofbauer G, Braun RP. Hautkrebsvorsorge [Early diagnosis of skin cancer]. Ther Umsch. 2010;67(9):439-46. German. doi: 10.1024/0040-5930/a000077
2. Mejbel HA, Torres-Cabala CA, Milton DR, Ivan D, Feldmeyer L, Namikawa K, Nagarajan P, Tetzlaff MT, Curry JL, Ross MI, Hwu WJ, Prieto VG, Aung PP. Prognostic significance of acral lentiginous histologic type in T1 melanoma. Mod Pathol. 2021 Mar;34(3):572-583. doi: 10.1038/s41379-020-0641-x
3. Basurto-Lozada P, Molina-Aguilar C, Castaneda-Garcia C, et al. Acral lentiginous melanoma: Basic facts, biological characteristics and research perspectives of an understudied disease. Pigment Cell Melanoma Res. 2021;34(1):59-71. doi:10.1111/pcmr.12885
4. Hogue L., Harvey V.M. Basal Cell Carcinoma, Squamous Cell Carcinoma, and Cutaneous Melanoma in Skin of Color Patients. Dermatol.Clin. 2019;37(4):519-526.
5. Ozdemir F, Errico MA, Yaman B, Karaarslan I. Acral lentiginous melanoma in the Turkish population and a new dermoscopic clue for the diagnosis. Dermatol Pract Concept. 2018;8(2):140-148. doi:10.5826/dpc.0802a14
6. Elefanti L, Zamuner C, Del Fiore P, Stagni C, Pellegrini S, Dall'Olmo L, Fabozzi A, Senetta R, Ribero S, Salmaso R, Mocellin S, Bassetto F, Cavallin F, Tosi AL, Galuppini F, Dei Tos AP, Menin C, Cappellesso R. The Molecular Landscape of Primary Acral Melanoma: A Multicenter Study of the Italian Melanoma Intergroup (IMI). Int J Mol Sci. 2021 Apr 7;22(8):3826. doi:10.3390/ijms22083826
7. Goydos JS, Shoen SL. Acral Lentiginous Melanoma. Cancer Treat Res. 2016;167:321-9. doi: 10.1007/978-3-319-22539-5_14
8. Saida T, Miyazaki A, Oguchi S, Ishihara Y, Yamazaki Y, Murase S, et al. Significance of dermoscopic patterns in detecting malignant melanoma on acral volar skin: results of a multicenter study in Japan. Arch Dermatol 2004; 140: 1233-1238. doi: 10.1001 / archderm.140.10.1233Fortin P.T.,
9. Freiberg A.A., Rees R., Sondak V.K., Johnson T.M. Malignant melanoma of the foot and ankle. J. Bone Jt. Surg. 1995;77:1396–1403. doi: 10.2106/00004623-199509000-00016
10. Howard MD, Xie C, Wee E, Wolfe R, McLean CA, Kelly JW, Pan Y. Acral lentiginous melanoma: differences in survival compared with other subtypes. Br J Dermatol. 2020 Apr;182(4):1056-1057. doi: 10.1111/bjd.18620.
11. Saida T, Koga H, Uhara H. Key points in dermoscopic differentiation between early acral melanoma and acral nevus. J Dermatol. 2011;38(1):25-34. doi: 10.1111/j.1346-8138.2010.01174.x.
12. Byrd KMWilson DCHoyler SSPeck GL Advanced presentation of melanoma in African Americans. J Am Acad Dermatol 2004;50 (1) 21- 24
13. Phan A, Dalle S, Touzet S, Ronger-Savlé S, Balme B, Thomas L. Dermoscopic features of acral lentiginous melanoma in a large series of 110 cases in a white population. Br J Dermatol. 2010 Apr;162(4):765-71. doi: 10.1111/j.1365-2133.2009.09594.x. Epub 2009 Nov 18. PMID: 19922528.
14. Desai A, Ugorji R, Khachemoune A. Acral melanoma foot lesions. Part 1: epidemiology, aetiology, and molecular pathology. Clin Exp Dermatol. 2017 Dec;42(8):845-848. doi: 10.1111/ced.13243
15. Bradford PT, Goldstein AM, McMaster ML, Tucker MA. Acral lentiginous melanoma: incidence and survival patterns in the United States, 1986-2005. Arch Dermatol. 2009;145(4):427-434. doi:10.1001/archdermatol.2008.609
16. Arrington JH, Reed RJ, Ichinose H, Krementz ET. Plantar lentiginous melanoma: A distinctive variant of human cutaneous malignant melanoma. Am Journal of Surgical Pathology. 1977;1(2):131–143.
17. Durbec F., Martin L., Derancourt C., Grange F. Melanoma of the hand and foot: Epidemiological, prognostic and genetic features. A systematic review. Br. J. Dermatol. 2012;166:727–739. doi: 10.1111/j.1365-2133.2011.10772.x 9-12
18. Markovic SN, Erickson LA, Rao RD, Weenig RH, Pockaj BA, Bardia A, Vachon CM, Schild SE, McWilliams RR, Hand JL, Laman SD, Kottschade LA, Maples WJ, Pittelkow MR, Pulido JS, Cameron JD, Creagan ET; Melanoma Study Group of the Mayo Clinic Cancer Center. Malignant melanoma in the 21st century, part 1: epidemiology, risk factors, screening, prevention, and diagnosis. Mayo Clin Proc. 2007 Mar;82(3):364-80. doi: 10.4065/82.3.364
19. Cabrera, M., Silva, V., Díaz de Medina, DJ, Hoell, B., Guglielmetti, V., Rohmann, K. et al. (1994). Estudio clinico de 113 casos demelanoma maligno . Revista Medica de Chile , 122 ( 8 ), 900–906.
20. Feibleman CE, Stoll H, Maize JC. Melanomas of the palm, sole, and nailbed: a clinicopathologic study. Cancer. 1980 Dec1;46(11):2492-504. doi:10.1002/1097-0142(19801201)46:11<2492::aid cncr2820461130>3.0.co;2-j
21. Minagawa A, Omodaka T, Okuyama R. Melanomas and Mechanical Stress Points on the Plantar Surface of the Foot. N Engl J Med. 2016 Jun 16;374(24):2404-6
22. Sheen, Y.‐S. , Liao, Y.‐H. , Lin, M.‐H. , Chen, J.‐S. , Liau, J.‐Y. , Tseng, Y.‐J., et al. A clinicopathological analysis of 153 acralmelanomas and the relevance of mechanical stress. Scientific Reports, 2017; 7(1), 5564.
23. Gandini S, Sera F, Cattaruzza MS, et al. Meta-analysis of risk factors for cutaneous melanoma: II. Sun exposure. Eur J Cancer. 2005;41:45–60
24. Usher-Smith JA, Emery J, Kassianos AP, Walter FM. Risk prediction models for melanoma: a systematic review. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2014;23:1450–63.
25. Gruber SB, Armstrong BK. Cutaneous and ocular melanoma. In: Schottenfeld D, Fraumeni JF, editors. Cancer Epidemiology and Prevention. New York, NY: Oxford University Press; 2006. pp. 1196–1229.
26. Garibyan L,Fisher DE.How sunlight causes melanoma.Curr Oncol Rep.2010 Sep;12(5):319-26. doi: 10.1007/s11912-010-0119-y.
27. Elder DE, Bastian BC, Cree IA, Massi D, Scolyer RA. The 2018 World Health Organization Classification of Cutaneous, Mucosal, and Uveal Melanoma: Detailed Analysis of 9 Distinct Subtypes Defined by Their Evolutionary Pathway. Arch Pathol Lab Med. 2020 Apr;144(4):500-522. doi: 10.5858/arpa.2019-0561-RA.
28. Fallah, M. , Pukkala, E. , Sundquist, K. , Tretli, S. , Olsen, J. H. , Tryggvadottir, L. , & Hemminki, K. (2014). Familial melanoma by histology and age: Joint data from five Nordic countries. European Journal of Cancer, 2014; 50(6), 1176–1183.10.1016/j.ejca.2013.12.023
29. Liu XK, Li J. Acral lentiginous melanoma. Lancet.2018 Jun 9;391(10137):e21. doi: 10.1016/S0140-6736(18)31071-7.]. Bello DM,Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0
30. Bradford P.T. Skin Cancer in Skin of Color. Dermatol Nurs. 2009:21(4): 170–178].
31. Ward-Peterson M, Acuna JM, Alkhalifah MK, Nasiri AM, Al-Akeel ES, Alkhaldi TM, et al. Association between race/ethnicity and survival of melanoma patients in the United States over 3 decades: A secondary analysis of SEER data. Medicine. 2016;95(17):e3315.
32. Culp MB, Lunsford NB. Melanoma Among Non-Hispanic Black Americans. Prev Chronic Dis 2019;16:180640.
33. Oh TS, Bae EJ, Ro KW, Seo SH, Son SW, Kim IH. Acral Lentiginous Melanoma Developing during Long-standing Atypical Melanosis: Usefulness of Dermoscopy for Detection of Early Acral Melanoma. Ann Dermatol. 2011;23(3):400-404. doi:10.5021/ad.2011.23.3.400
34. Park HS, Cho KH. Acral lentiginous melanoma in situ: a diagnostic and management challenge. Cancers (Basel). 2010;2(2):642-652. doi:10.3390/cancers2020642.
35. Breslow A. Thickness, cross-sectional areas and depth of invasion in the prognosis of cutaneous melanoma. Ann Surg. 1970 Nov;172(5):902-8. doi: 10.1097/00000658-197011000-00017.12885
36. Seyed Jafari SM, Lieberherr S, Cazzaniga S, Beltraminelli H, Haneke E, Hunger RE. Melanoma of the Nail Apparatus: An Analysis of Patients' Survival and Associated Factors. Dermatology. 2022;238(1):156-160. doi: 10.1159/000514493.
37. Liopyris K., Navarrete-Dechent C., Mancebo S.E. et al. Dermoscopic appearance of amelanotic volar melanoma compared with volar angioma. JAMA Dermatol. 2019;155(4):500-501. doi:10.1001/jamadermatol.2018.5487
38. Chang JW. Acral Melanoma: A Unique Disease in Asia. JAMA Dermatol. 2013;149(11):1272–1273. doi:10.1001/jamadermatol.2013.5941
39. Bello DM, Chou JF, Panageas KS, Brady MS, Coit DG, Carvajal RD, Ariyan CE. Prognosis of acral melanoma: a series of 281 patients. Ann Surg Oncol. 2013 Oct;20(11):3618-25. doi: 10.1245/s10434-013-3089-0.
40. Zell JA, Cinar P, Mobasher M, Ziogas A, Meyskens FL Jr, Anton-Culver H. Survival for patients with invasive cutaneous melanoma among ethnic groups: the effects of socioeconomic status and treatment. J Clin Oncol. 2008 Jan 1;26(1):66-75. doi:10.1200/JCO.2007.12.3604.
41. Hall KH, Rapini RP. Acral Lentiginous Melanoma. 2021 Jul 28. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan–. PMID: 32644539.
42. Rigby HS, Briggs JC. Subungual melanoma: a clinico-pathological study of 24 cases. Br J Plast Surg. 1992 May-Jun;45(4):275-8. doi: 10.1016/0007-1226(92)90051-x
43. Mikhail GR. Hutchinson's sign. J Dermatol Surg Oncol. 1986 May;12(5):519-21. doi: 10.1111/j.1524 4725.1986.tb01943.x
44. DeMartinis NC, Cohen PR. Non-Melanoma-Associated Dyschromia of the Proximal Nail Fold. Cureus. 2016;9;8(12):e922. doi:10.7759/cureus.922.
45. Kawabata Y, Ohara K, Hino H, Tamaki K. Two kinds of Hutchinson's sign, benign and malignant. J Am Acad Dermatol. 2001 Feb;44(2):305-7. doi: 10.1067/mjd.2001.112398
46. Dika E, Patrizi A, Fanti PA, Chessa MA, Reggiani C, Barisani A, Piraccini BM. The Prognosis of Nail Apparatus Melanoma: 20 Years of Experience from a Single Institute. Dermatology. 2016;232(2):177-84. doi: 10.1159/000441293
47. Blessing K., Kernohan N.M., Park K.G.M. Subungual malignant melanoma: Clinicopathological features of 100 cases. Histopathology. 1991;19:425–430. doi: 10.1111/j.1365-2559.1991.tb00232.x.
48. Geizhals S, Lipner SR. Retrospective Case Series on Risk Factors, Diagnosis and Treatment of Pseudomonas aeruginosa Nail In fections. Am J Clin Dermatol. 2020 Apr;21(2):297-302. doi: 10.1007/s40257-019-00476-0.
49. Lee H, Mun JH, Cho S, Park H. Clinical analysis of Pseudomonas aeruginosa-positive and -negative green nail syndrome cases:A single center retrospective analysis. J Dermatol. 2021 Jul;48(7):1073-1076. doi: 10.1111/1346-8138.15832.
50. Glaser DA, Remlinger K. Blue nails and acquired immunodeficiency syndrome: not always associated with azidothymidine use.Cutis. 1996 ;57(4):243-4.
51. Vignes S, Baran R. Yellow nail syndrome:a review. Orphanet J Rare Dis. 2017 Feb 27;12(1):42. doi:10.1186/s13023-017-0594-4.
52. Tokonami A, Ohta R, Tanaka Y, Amano S, Sano C. Pericarditis With Cardiac Tamponade Mimicking Yellow Nail Syndrome in a Patient With Rheumatoid Arthritis and a Paucity of Joint Symptoms. Cureus. 2022 Jan 23;14(1):e21523. doi: 10.7759/cureus.21523.
53. Fukaya T, Kasai H, Saito M, Sasatani Y, Urushibara T, Sakao S. Yellow nail syndrome with massive chylothorax after esophagectomy: A case report. Respir Med Case Rep. 2021 Jun 12;33:101448. doi: 10.1016/j.rmcr.2021.101448.
54. Akcam M, Artan R, Akcam FZ, Yilmaz A. Nail discoloration induced by doxycycline. Pediatr Infect Dis J. 2005 Sep;24(9):845-6. doi: 10.1097/01.inf.0000177283.71692.56
55. Oppel T, Korting HC. Onychodystrophy and its management. Ger Med Sci. 2003;1:Doc02.
56. Kaur R, Kashyap B, Bhalla P. Onychomycosis--epidemiology, diagnosis and management. Indian J Med Microbiol. 2008 Apr-Jun;26(2):108-16
57. Jefferson J, Rich P. Melanonychia. Dermatol Res Pract. 2012;2012:952186. doi: 10.1155/2012/952186.
58. Skowron F, Combemale P, Faisant M, Baran R, Kanitakis J, Dupin M. Functional melanonychia due to involvement of the nail matrix in systemic lupus erythematosus. J Am Acad Dermatol. 2002 Aug;47(2 Suppl):S187-8. doi: 10.1067/mjd.2002.108494.
59. Koch K, Tikly M. Spectrum of cutaneous lupus erythematosus in South Africans with systemic lupus erythematosus. Lupus. 2019 Jul;28(8):1021-1026. doi: 10.1177/0961203319856091
60. Singal A, Bisherwal K. Melanonychia: Etiology, Diagnosis, and Treatment. Indian Dermatol Online J. 2020;11(1):1-11. Published 2020 Jan 13. doi:10.4103/idoj.IDOJ_167_19
61. Richert B, Iorizzo M, Tosti A, André J. Nail bed lichen planus associated with onychopapilloma. 2007; 156(5) 5:1071-1072.
62. Kumar S, Dixit R, Karmakar S, Paul S. Unusual nail pigmentation following cyclophosphamide-containing chemotherapy regimen. Indian J Pharmacol. 2010 Aug;42(4):243-4. doi: 10.4103/0253-7613.68433
63. Daniel CR, Scher RK. Nail changes caused by systemic drugs or ingestants. Dermatol Clin. 1985 Jul;3(3):491-500.
64. André J, Lateur N. Pigmented nail disorders. Dermatol Clin. 2006;24(3):329-39.

65. Baran R, Kechijian P. Longitudinal melanonychia (melanonychia striata): diagnosis and management. J Am Acad Dermatol. 1989 Dec;21(6):1165-75. doi: 10.1016/s0190-9622(89)70324-8

66. Fernandez‐Flores, A. , & Cassarino, D. S. Histopathological diagnosis of acral lentiginous melanoma in early stages. Annals of Diagnostic Pathology, 2017; 26, 64–69. 10.1016/j.anndiagpath.2016.08.005
67. Goettmann-Bonvallot S, André J, Belaich S. Longitudinal melanonychia in children: a clinical and histopathologic study of 40 cases. J Am Acad Dermatol. 1999 Jul;41(1):17-22. doi: 10.1016/s0190-9622(99)70399-3.
68. Yim SH, Kwon IS, Hong D, Jung KE, Lee Y, Seo YJ, Choi CW. Predictor of Subungual Melanoma against Benign Longitudinal Melanonychia: A Retrospective Cohort Study from Korea. Ann Dermatol. 2021 Apr;33(2):147-153. doi: 10.5021/ad.2021.33.2.147.
69. Ko D, Oromendia C, Scher R, Lipner SR. Retrospective single-center study evaluating clinical and dermoscopic features of lon gitudinal melanonychia, ABCDEF criteria, and risk of malignancy. J Am Acad Dermatol. 2019 May;80(5):1272-1283. doi:10.1016/j.jaad.2018.08.033.
70. Levit EK, Kagen MH, Scher RK, Grossman M, Altman E. The ABC rule for clinical detection of subungual melanoma. J Am AcadDermatol. 2000 Feb;42(2 Pt 1):269-74. doi: 10.1016/S0190-9622(00)90137-3.
71. Sawada M, Yokota K, Matsumoto T, Shibata S, Yasue S, Sakakibara A, Kono M, Akiyama M. Proposed classification of longitudinal melanonychia based on clinical and dermoscopic criteria. Int J Dermatol. 2014 May;53(5):581-5. doi: 10.1111/ijd.12001
72. Ezenwa E, Stein JA, Krueger L. Dermoscopic features of neoplasms in skin of color: A review. Int J Womens Dermatol. 2021;7(2):145-151. Published 2021 Jan 19. doi:10.1016/j.ijwd.2020.11.009
73. Braun RP, Thomas L, Dusza SW, Gaide O, Menzies S, Dalle S, Blum A, Argenziano G, Zalaudek I, Kopf A, Rabinovitz H, Oliviero M, Perrinaud A, Cabo H, Pizzichetta M, Pozo L, Langford D, Tanaka M, Saida T, Perusquia Ortiz AM, Kreusch J, De Giorgi V, Piccolo D, Grichnik JM, Kittler H, Puig S, Malvehy J, Seidenari S, Stanganelli I, French L, Marghoob AA. Dermoscopy of acral melanoma: a multicenter study on behalf of the international dermoscopy society. Dermatology. 2013;227(4):373-80. doi:10.1159/000356178.
74. Pehamberger H, Steiner A, Wolff K. In vivo epiluminescence microscopy of pigmented skin lesions. I. Pattern analysis of pigmented skin lesions. J Am Acad Dermatol. 1987;17:571–583. doi: 10.1016/S0190-9622(87)70239-4
75. Kittler H. Evolution of the Clinical, Dermoscopic and Pathologic Diagnosis of Melanoma. Dermatol Pract Concept. 2021 Jul 1;11(Suppl 1):e2021163S. doi: 10.5826/dpc.11S1a163S
76. Lallas, A. , Kyrgidis, A. , Koga, H. , Moscarella, E. , Tschandl, P. , Apalla, Z. , … Argenziano, G. (2015). The BRAAFF checklist: A new dermoscopic algorithm for diagnosing acral melanoma. British Journal of Dermatology, 173(4), 1041–1049.
77. Saida T, Koga H. Dermoscopic patterns of acral melanocytic nevi: their variations, changes, and significance. Arch Dermatol. 2007 Nov;143(11):1423-6. doi: 10.1001/archderm.143.11.1423.
78. Wawrzynkiewicz M, Pastuszczak M, Chlebicki M, Wojas-Pelc A. Acral melanocytic nevi in the Polish population: prevalence, clinical characteristics and dermoscopic patterns. Postepy Dermatol Alergol. 2019 Oct;36(5):581-588. doi: 10.5114/ada.2018.77500.
79. Han B, Hur K, Ohn J, Lim SS, Mun JH. Acral lentiginous melanoma in situ: dermoscopic features and management strategy. SciRep. 2020 Nov 25;10(1):20503. doi: 10.1038/s41598-020-77425-z.
80. Darmawan CC, Jo G, Montenegro SE, Kwak Y, Cheol L, Cho KH, Mun JH. J Am Acad Dermatol. Early detection of acral melanoma: A review of clinical, dermoscopic, histopathologic, and molecular characteristics.2019; 81(3):805-812.
81. Roh D, Shin K, Kim WI, Yang MY, Lee WK, Kim HS, Ko HC, Kim BS, Kim MB. Comparison of dermoscopic features between congenital and acquired acral melanocytic nevi in Korean patients. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020 May;34(5):1004-1009. doi: 10.1111/jdv.16089.
82. Braun RP, Baran R, Saurat JH, Thomas L. Surgical Pearl: Dermoscopy of the free edge of the nail to determine the level of nail plate pigmentation and the location of its probable origin in the proximal or distal nail matrix. J Am Acad Dermatol. 2006 Sep;55(3):512-3. doi: 10.1016/j.jaad.2005.09.032
83. Jellinek N. Nail matrix biopsy of longitudinal melanonychia: diagnostic algorithm including the matrix shave biopsy. J Am Acad Dermatol. 2007 May;56(5):803-10. doi: 10.1016/j.jaad.2006.12.001
84. Starace M, Alessandrini A, Brandi N, Piraccini BM. Use of Nail Dermoscopy in the Management of Melanonychia: Review. Dermatol Pract Concept. 2019 ;9(1):38-43. doi: 10.5826/dpc.0901a10
85. Tosti A, Piraccini BM, de Farias DC. Dealing with melanonychia. Semin Cutan Med Surg. 2009;28(1):49–54.
86. Hirata SH, Yamada S, Enokihara MY, et al. Patterns of nail matrix and bed of longitudinal melanonychia by intraoperative der matoscopy. J Am Acad Dermatol. 2011;65(2):297–303.
87. Xavier-Júnior JC, Munhoz T, Souza V, de Campos EB, Stolf HO, Marques ME. Focal invasiveness in complete histological analyses of a large acral lentiginous melanoma. Diagn Pathol. 2015 Jun 20;10:73. doi: 10.1186/s13000-015-0307-z
88. Montenegro Jaramillo SE, Jo G, Darmawan CC, Lee C, Mun JH. Dermoscopic findings of Spitz nevus on acral volar skin. Indian J Dermatol Venereol Leprol. 2019 Nov-Dec;85(6):629-632. doi: 10.4103/ijdvl.IJDVL_728_18
89. Wiedemeyer K, Guadagno A, Davey J, Brenn T. Acral spitz nevi: A clinicopathologic study of 50 cases with immunohistochemical analysis of P16 and P21 expression. Am J Surg Pathol 2018;42:821-7.
90. Yamaura M, Takata M, Miyazaki A, Saida T. Specific dermoscopy patterns and amplifications of the cyclin D1 gene to define histopathologically unrecognizable early lesions of acral melanoma in situ. Arch. Dermatol. 2005;141:1413–1418. doi: 10.1001/arch derm.141.11.1413
91. Zeng W, Zhang W, Feng J, He X, Lu H. Expression of OPN3 in acral lentiginous melanoma and its associated with clinico histopathologic features and prognosis. Immun Inflamm Dis. 2021 Sep;9(3):840-850. doi: 10.1002/iid3.438
92. Puglisi R, Bellenghi M, Pontecorvi G, Pallante G, Carè A, Mattia G. Biomarkers for Diagnosis, Prognosis and Response to Immunotherapy in Melanoma. Cancers (Basel). 2021 Jun 9;13(12):2875. doi: 10.3390/cancers13122875

Цитата үчүн

Исупова А.А., Якубов А.С., Исупов Р.В., Ланг М.Ю. Азиялык адамдардын акралдык меланомасын эрте диагнозунун
маселелери, аларды чечүүнүн мүмкүн жолдору. Кыргызстандын саламаттык сактоо 2022,№1, с. 149-157. https://dx.doi.org/10.51350/zdravkg20223122149

Просмотров: 653
Copyright MAXXmarketing GmbH
JoomShopping Download & Support

Новости

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ КЫРГЫЗСКОЙ РЕСПУБЛИКИ

НАУЧНО-ПРОИЗВОДСТВЕННОЕ ОБЪЕДИНЕНИЕ «ПРОФИЛАКТИЧЕСКАЯ МЕДИЦИНА»

ИНФОРМАЦИОННОЕ ПИСЬМО

от 15 апреля 2022 г.

 

Уважаемые коллеги!

Приглашаем Вас принять участие в научно-практической конференции молодых ученых «Горы и общественное здоровье –инновационные идеи», посвященной году «Защита горных экосистем и климатической устойчивости».

Место и сроки проведения: Кыргызская Республика, г. Бишкек;

15 декабря 2022 г. Рабочие языки: кыргызский, русский, английский.

На конференции предусмотрены пленарные и секционные заседания:

1. Медицина окружающей среды, климат и здоровье;

2. Эпидемиология и инфекционные болезни;

Программу опубликуют на вебсайте: www.npopm.kg до 01.12.2022г.

 

Материалы конференции опубликуют в виде статей, присланных до 03 октября 2022 г.

в журнале «Здравоохранение Кыргызстана», №4, 2022 г. на кыргызском, русском и английском языках, входящий в РИНЦ. Требования к оформлению статей изложены на вебсайте журнала: www.zdrav.kg.

Принимаются статьи с текстом (не более 7-8 страниц) в электронной версии по адресу: 720005, Кыргызская Республика, г.Бишкек, ул. Байтика Баатыра 34; каб. №11.

E-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript..

Конт. телефоны:   +996 312 544575, +996 700 737241  Мергенова И.О.

+996 312 544578; +996 777 476217  Муждабаев О.Р.

 

Информация: Приглашение участникам-партнерам из стран ближнего и дальнего зарубежья составляются от имени НПО “Профилактическая медицина”. Возможные изменения и сведения по конференции будут вывешиваться на вебсайте: www.npopm.kg

Контактные телефоны: +996 312 544578; +996 702 849088

 

ОРГКОМИТЕТ

 

ОЦЕНКА ИММУНИТЕТА В УСЛОВИЯХ ПАНДЕМИИ

В Кыргызстане продолжается бесплатное тестирование на антитела к COVID для исследования. Нужны участники из регионов!

В семи областях Кыргызстана и г.Бишкек и г.Ош проходит оценка популяционного иммунитета населения к вирусу SARS COV-2 в условиях пандемии COVID-19, которую проводит Научно-производственное объединение «Профилактическая медицина» Минздрава и соцразвития республики совместно с группой исследователей из Санкт-Петербургского НИИ эпидемиологии и микробиологии им.Пастера. 

Информация о состоянии популяционного иммунитета необходима для планирования санитарно-противоэпидемических мероприятий, в том числе вакцинации населения против COVID-19, как в отдельно взятом регионе, так и в стране в целом.

Общее число волонтёров должно составить 10752 человека (не менее 2688 чел. по 4 регионам с соблюдением принципа их равномерного распределения по районным центрам области, по возрасту и полу). Исключаются лица, находящиеся на стационарном и амбулаторном лечении с ковидным диагнозом.

В г.Бишкек уже набран материал, нужны участники из регионов!

К этапам проводимого исследования относятся информационная компания, анкетирование и получение информированного согласия; забор и транспортировка крови, получение и сохранение плазмы; проведение лабораторного анализа и обработка результатов.

Для определения IgG-антител к вирусу SARS-Cov-2 в исследовании используются ИФА тест-системы производства России для качественного и количественного определения антител.

Записаться добровольцем на исследование можно здесь: https://pasteurclinic-anketa.ru/all_antitela.php?reg_id=102

За справками и дополнительной информацией обращаться к Нурматову Зуридину Шариповичу, руководителю Республиканского научно-практического центра по контролю вирусных инфекций НПО «Профилактическая медицина», тел. 0778 100 477.

ЭПИДЕМИОЛОГ ИЗ АТЛАНТЫ МИХАИЛ ФАВОРОВ: ЕСЛИ СЕЙЧАС ОПЯТЬ ЗАКРЫТЬСЯ НА ЖЕСТКИЙ КАРАНТИН, ВЫ ТОЛЬКО УХУДШИТЕ СИТУАЦИЮ

Валерия ЧЕПУРКО (14 июля, 22:00)

Лето на самой макушке, а коронавирус не отстает. Почему не оправдались надежды на солнышко, отчего в разных странах разная смертность, нужно ли делать тесты и откуда вообще взялась эта напасть? Сегодня наш собеседник — один из ведущих в мире эпидемиологов, доктор медицинских наук из Атланты (США), профессор, президент компании DiaPrep System Inc Михаил Фаворов.

До середины прошлого века человечество ничего не знало о коронавирусах

 — Михаил Олегович, с высоты своего опыта работы в очагах различных инфекций можете назвать этот коронавирус уникальным?

— Благодарю, что пригласили на беседу. Для меня очень важно объяснять реалии и природу этого явления, потому что мир насыщен всевозможной информацией, и многое из того, о чем пишут, не соответствует действительности.

Прежде чем говорить об уникальности коронавируса, мы должны понять, что любой патоген — это сформировавшийся микроорганизм, который вступает во взаимодействие с людьми — макроорганизмами.

Нельзя говорить, что вирус такой или сякой. Если вирус не находится внутри человека — это неживая материя. Он не способен ни питаться, ни размножаться. И только когда попадает внутрь макроорганизма, то есть в нас, он становится живым.

Поэтому говорить об уникальности вируса как такового бессмысленно. Уникальность в его взаимодействии.

До середины прошлого века человечество о коронавирусах ничего, по сути, не знало. Они не вызывали тяжелых заболеваний, поэтому ими особенно не занимались.

Первый прорыв в понимании серьезности вопроса произошел относительно недавно. С 2002 по 2004 год в Китае вспыхнула эпидемия тяжелого острого респираторного синдрома — SARS. Теперь его называют SARS-1. Я тогда много работал, поэтому к вспышке SARS-CoV-2 был подготовлен.

Без вмешательства людей вирус не был таким патогенным

 — Откуда этот вирус взялся на нашу голову?

— Коронавирусы не появляются сами по себе, не возникают из ниоткуда. Каждый раз это определенные закономерности и, как правило, изменения во внешней среде.

Взять, например, этот коронавирус. То, что он сам по себе попал на базар в Ухане, откуда началась эпидемия, это просто невозможно. Вирус нашли у летучих мышей, которые обитают за тысячи километров от Уханя. И привезли в этот город вместе с мышами для изучения в местном институте.

То есть, пока люди не полезли в пещеры, не нашли этих мышей, не вырвали их из природной среды и не начали экспериментировать, вируса не было.

Мы также знаем, что вирус имеет такое же отношение к мышам, как и к панголинам. Сам по себе у мышей он не был патогенным для человека. А вот когда встретился с вирусом панголины и рекомбинировал — обменялся генной информацией, то стал страшно заразным для людей. Понимаете, какое значение имеют изменения во внешней среде?

 — Как вирус мог вырваться из института?

— Разговоров вокруг этой темы много. Заболел сотрудник и пошел на базар за покупками. Или подопытную мышь кто-то тайком вынес и продал.

В Китае такие дикие животные используются в медицине. По слухам, стоимость мышей этого вида для лечения равна по весу стоимости золота. Вполне могу представить, что кто-то из технических сотрудников института вместо того, чтобы утилизировать зараженную мышь, понес ее на базар. У людей остается коррумпированное мышление.

С точки зрения происхождения этот вирус действительно можно назвать уникальным. Теоретически он мог произойти без участия человека. Но вероятность того, что панголины обменялись генетической информацией с мышами, которые живут от них за тысячи километров, сами понимаете, насколько небольшая.

 Чем больше людей переболеют летом, тем легче будет осенью

 — В начале весны, когда мы входили в карантин, ожидали, что летом наступит затишье, что вирус будет гибнуть при высоких температурах. А он живет и живет.

— Вирус, несомненно, является сезонным. Но когда впервые попадает в популяцию, ему не до поры года — все восприимчивы, заражение идет легко. Есть еще один момент, и я о нем предупреждал, но не смог убедить.

С началом эпидемии были введены очень жесткие карантинные меры. Все сидят дома, заражения замедляются, все хорошо. Но долго держать население в изоляции не выходит. А как только отпустили — все бросились делать дела, которые из-за карантина пришлось отложить. Один поспешил зубы лечить, другой — колеса менять, третий пошел на работу в офис. Число контактов настолько возросло, что опять пошла вспышка, несмотря на то что лето и не сезон. Сейчас вирусу не очень комфортно, он не такой смертельный. И чем больше людей переболеют летом, тем выше будет коллективная иммунизация к началу ноября, когда начнется сезон.

 

 — Какая сейчас оптимальная модель поведения общества?

— Я считаю, что у вас оптимальная модель. Украина, безусловно, переживает стресс, нагрузку на систему здравоохранения. С другой стороны, возвращать сейчас жесткий карантин было бы неправильно.

Надо ориентироваться не по числу заболеваний. Число — это сколько человек обследовано, насколько хорошие и плохие использованы тесты. Надо ориентироваться на количество коек в больницах. Если их хватает, ситуацию надо держать.

 Профилактике научила «испанка»

 — Но вот уже в нашем Минздраве говорят, что разворачивают больницы второй очереди.

— Пока только разворачивается, это не плохо. Это не Испания, где не хватало крематориев. Надо все время следить за ситуацией в разных регионах. Регулировать не по стране, а по вспышкам.

Если сейчас все опять закрыть на жесткий карантин, вы ничего не выигрываете. Только ухудшите ситуацию в сезоне.

 — Сейчас все боятся второй волны. Это оправдано?

— Сезон коронавирусов немного сдвинут по отношению к гриппу: примерно с начала ноября до середины января. Вспышка 2020 года пришлась на конец сезона, но она наложилась на отсутствие любой иммунной прослойки. Говорить, что будет в сезон, сейчас трудно, не могу предсказать. Но не меньше, чем в начале вспышки — это да.

Я делаю сравнение с единственно возможной моделью — эпидемией «испанки», которая началась в 1918 году. В Украине тогда учета не было, кого застрелили, а кто умер от гриппа. Но в Америке был. Так вот после 1918 года, первого года пандемии, эпидемия 1919-го была в пять раз выше.

Однако с тех пор прошло сто лет. За это время и лечение стало лучше, и меры профилактики эффективнее. Ведь только в период «испанки» изобрели это социальное дистанцирование, впервые надели маски. Раньше ничего такого не знали.

 — На примере SARS-1 можно создать модель? Почему он не разошелся по миру? Вирус один, мутации — разные

— Такую модель делать очень сложно. Это разные вирусы, SARS-1 гораздо труднее передавался. Он был хуже приспособлен для передачи, чем SARS-CoV-2.

 — Есть версия, что разные народности воспринимают вирус по-разному. Одни — легче, другие — труднее.

— Нет, этого быть не может. Мы очень близки друг к другу. В нашем геноме нет ощутимого различия по расовым или национальным признакам. А те, которые есть, настолько минимальны, что вирус о них ничего не знает. Я эти басни слышу всю свою жизнь. Мы все одинаковые, вирус разный.

 — Так он не один, этот COVID-19?

— Вирус один, разные мутации, которые делают передачу более или менее легкой.

В европейской части мира циркулирует вирус с определенной мутацией, который более тяжелый. Такого нет — пока — в Юго-Восточной Азии. Поэтому в Южной Корее — 0,5% летальности, а в Италии до 20% в некоторых провинциях.

Но это временное отложение. В мире пойдет замена. На днях я посмотрел данные по Гонконгу. Там всполошились: ой, у нас опять пошел подъем, наверное, мы плохо зажимаем карантин. Да нет, это к вам приехал «новый» вирус — европейский.

Вирус не является однородным. Он изменяется, попадая в нашу среду. Он жил в мышах тысячу лет и не вызывал тяжелых болезней, а когда оказался среди людей, то действует совершенно по-другому, на другие рецепторы, другие клетки.

У вирусов есть участки, которые патогенно стабильны. А менее важные могут изменять их на подвиды от более тяжелого до менее тяжелого.

 Уже в два раза снизилась летальность

— Может такое случиться, что этот вирус мутирует в лучшую для людей сторону?

— Именно это и происходит. Вирус не наш, но он очень хочет с нами жить. А для этого должен прекратить убивать хозяина. Он все время старается стать легче и легче. Циркулируя среди людей, набирает все больше человеческих качеств, по сравнению с мышами.

И коронавирус уже в два раз снизил летальность. Такого кошмара, как был в Италии, больше нет. Потому что те вирусы, которые были очень тяжелые вначале, они всех своих хозяев поубивали и не передаются. А те, которые более легкие, будут передаваться.

Через пять-десять лет коронавирус вызовет у нас разве что легкий насморк, на который мы и внимания не будем обращать. Такая закономерность всех зоонозных инфекций.

 Лекарство есть, но только для тяжелых и только в Америке

 — А может быть лекарство от этого вида коронавируса?

— Во-первых, лекарство уже есть, его разработала фирма Gilead.  Но выпускают его пока только в США и только для США.

Это противовирусный препарат. Но проблема в том, что он не дает того результата, которого ожидали: быстрого и полного выздоровления. Летальность просто снижена с 11% до 8%, в два раза сокращается длительность болезни. То есть препарат действует, но не так хорошо, как хотелось бы.

— А это лекарство могут выпускать в планетных масштабах?

— Если у нас 7 миллиардов человек, нуждаться будет полмиллиарда, и я думаю, что таких производств пока не существует. Этот препарат и в Америке сейчас предназначен только для тяжелых больных, его нельзя применять при легких формах.

И США не желают его никуда продавать. Американские медики разделяют опасения перед сезонностью коронавируса.

 Не миф, но псевдознание

 — Еще к вопросу о мифах: писали, что восприимчивость к вирусу зависит от группы крови. Например, «первые» заболевает реже, чем «вторые».

— Любая болезнь некоторым образом связана с группой крови. Почему — мы не знаем. И чтобы это подтвердить, нужны большие исследования по группам населения. Вот вы знаете, какая у вас в Киеве группа крови главная? А во всей Украине?.. Даже если бы знали, то что-то смогли бы поменять?

Это не миф, но это псевдознание, которое ничем не поможет, зато может кого-то напугать. А психическое состояние в обществе и так подорвано. Молодые люди боятся выйти на улицу, чтобы не заразиться.

 — Когда, по вашим прогнозам, может появиться вакцина?

— Чтобы была вакцина, ее нужно испытать. И уже испытывают на добровольцах. Вот в России взяли батальон солдат и вводят им препарат. А дальше как? Будут эти люди защищены или нет, никто не скажет. Нужен опыт наблюдений.

Я раньше сезона 2021 года вакцину не ожидаю. По крайней мере для большого числа людей. Может быть, кому-то привьют из власть имущих или богатых, но появится ли она массово — вряд ли.

 — А может произойти так, что, когда вакцину окончательно одобрят, в ней уже и потребности не будет?

— И на этот вопрос сегодня никто не ответит. Мы не знаем, и я об этом уже говорил, какая будет ситуация в следующем году. Если сезон окажется большим, многие сами иммунизируются. Но потребность в вакцине есть, вакцина необходима, особенно для групп риска.

Широкое тестирование необходимо

 — Существуют ли люди, которые не заразятся, у которых природный иммунитет?

— Терминология не верная. Иммунитета нет. Есть люди с врожденной невосприимчивостью. Но какие тут действуют механизмы, наука тоже еще не знает, и таких людей нельзя выделить из популяции.

Зато мы знаем, что есть люди, которые переносят коронавирус без клинических форм, их в два-три раза больше, чем тех, кто имеет клинические формы — от легких до тяжелых симптомов.

Это касается не только COVID-19, есть люди, врожденно устойчивые к различным инфекциям.

 — Сегодня многие хотят сдать тест в надежде, что обнаружатся антитела. Есть в этом смысл?

— Конечно! Широкое тестирование необходимо. Тесты должны быть везде и доступны не просто для населения, но отдельно для организованных групп — армии, полиции, врачей в первую очередь. Хоть каждый день делайте тесты!

Почему? Потому что вчера тест был негативный, а сегодня может быть позитивный. Значит, садись дома и не распространяй инфекцию.

К сожалению, упор сейчас пошел на ПЦР-тесты, которые дают только половину подтверждений. Это неправильно. Надо прекратить делать массово ПЦР. Если будете здоровых тестировать, все выявленные случаи окажется ложно положительными.

Моя наука очень сложная, я не могу все объяснить в одном интервью. Но заключение простое: надо проходить тест на антитела. И если он положительный, тогда делать ПЦР.

 — Вы имеете в виду ИФА-тесты?

— ИФА или рапид-тесты (быстрые) хорошего качества на наличие антител. Потому что у бессимптомных больных эти антитела могут появиться за неделю до того, как ПЦР тест их покажет.

 — А как вы оцените наши украинские тесты?

— Украинские ИФА-тесты, которые мне удалось в нашей компании провести через международный стандарт качества, относятся к одним из лучших тестов в мире.

Сейчас хотим уговорить украинских специалистов сделать рапид-тест.  Я привез такие образцы турецкого производства. Могу испытать прямо на вас, результат в течение 15 минут.

 Маски — не самое тяжелое испытание

 — Спасибо, очень интересно. Но сначала последний вопрос: добрая часть украинцев считают, что коронавирус — это заговор масонов с «рептилоидами», а на самом деле ничего страшного не происходит. Что вы таким скажете?

— Я скажу: носите маски. Во-первых, маски уменьшают дозу вируса, которую можно получить от носителя, болезнь будет менее тяжелой. Во-вторых, и это главное, маски нужны, чтобы защитить других. Если вы не будете носить маски, вы заразите ваших стариков – отца, маму, тестя, тещу, и они умрут.

Да, не нравится, да, душно. Но маски — это не самое тяжелое испытание. Я четыре года работал в Корее. Там все надевают маски, когда заходят в метро. Они себя защищают, не хотят дышать теми паразитами, которые есть в толпе. А у нас это почему-то считается насилием над личностью.

И вот что еще скажу: разговоры про заговор хороши, пока ты не видишь самой болезни. А вот как только сосед заразится, как у него начнется пневмония, из которой месяц не сможет вылезти, вот тогда отпадает охота говорить о «рептилоидах».

То, что сейчас происходит в Украине, — это относительно низкая заболеваемость и низкая смертность. Цените! Проветривайте помещения, мойте руки, защищайте органы дыхания.

Никаких «рептилоидов» нет, вакцина — будет. Но сначала нам надо пережить тот сезон, который надвигается.

 Досье «КП» в Украине»

Уроженец СССР, доктор Михаил Фаворов сейчас живет и работает в Атланте (штат Джорджия, США). С 1993 года является членом Американского общества микробиологии, автор более 100 научных работ.

Известен как международный эксперт в области общественного здравоохранения и эпидемиологии. Работал в самых разных регионах мира на изучении и подавлении очагов редких видов инфекций.

Будучи региональным директором программы CDC в Центральной Азии, содействовал внедрению дозорного эпиднадзора за ВИЧ-инфекцией, гепатитом С и сифилисом в группах риска, внедрил программу универсальной вакцинации новорожденных от вирусного гепатита B, инициировал внедрение программы обеспечения и контроля качества лабораторной диагностики ВИЧ и туберкулеза.

На посту заместителя генерального директора Международного института вакцин (IVI) занимался внедрением программ вакцинации от брюшного тифа, вируса папилломы, холеры, гриппа, пневмококковой инфекции, менингококковой инфекции.

ПРОФЕССОР КАСЫМОВ: В СТАТИСТИКЕ ПО КОРОНАВИРУСУ ДОЛЖНЫ БЫТЬ ВСЕ, У КОГО СИМПТОМЫ COVID

29 июня 2020 14:38. Тема: Коронавирус в Кыргызстане (1787 материалов)

Редакция Kaktus.media задала несколько вопросов главе научно-производственного объединения «Профилактическая медицина», доктору медицинских наук, профессору Омору Касымову по поводу ситуации с внебольничной пневмонией в Кыргызстане.

Что делать, если у вас появились симптомы COVID-19. Алгоритм действий  5

— Как вы считаете, в чем проблема ПЦР-тестирования в Кыргызстане?

— ПЦР считается достаточно точным методом, но сейчас много ложноотрицательных результатов. Потому что человек заболел, у него вырабатываются антитела, идут реакции, на этом этапе заболевания могут быть ложноотрицательные результаты.

Известный эпидемиолог, инфекционист, доктор медицинских наук Михаил Фаворов, работающий сегодня в Атланте (США), высказался по поводу ПЦР-тестирования. Он сказал, что те, у кого ПЦР-анализ был отрицательный — у 70% оказались антитела положительными.

— Вам не кажется, что Минздрав, включая в статистику по коронавирусу только тех, у кого положительные результаты теста, фактически занижает масштаб эпидемии? Уже и врачам, и гражданам понятно, что рост внебольничной пневмонии — это и есть неучтенные случаи коронавируса. Плюс телефоны скорой и поликлиник обрывают те, у кого пневмонии еще нет, но другие симптомы уже появились.

— Конечно, нужно менять алгоритм как можно быстрее.

ПЦР-анализы не имеют большого значения. Все клинические симптомы как при коронавирусе должны рассматриваться как коронавирус. Нечего гонять людей на ПЦР-тестирование. И нечего статистику скрывать. Даже помощь международных организаций проще мобилизовать, когда в отчетности отражается реальный масштаб эпидемии. Я считаю, что нужны решительные меры по разворачиванию коек. Например, в Национальном хирургическом центре, в 4-й горбольнице. Нужно подготовить манеж Физкультурного института, чтобы готовиться к осени.

— Вам не кажется, что лучше уже переболеть дома в условиях, когда непонятно, есть ли койки, достаточно ли медперсонала?

— Важно правильно дифференцировать больных по тяжести. Да, лучше лежать дома, если состояние не критическое, но не хватает кадрового потенциала в первичном звене — в поликлиниках. Мне кажется, нужно мобилизовать старшекурсников, чтобы они консультировали по телефону, по WhatsApp и другим мессенджерам.

КАК В КЫРГЫЗСТАНЕ БУДУТ ОПРЕДЕЛЯТЬ, У КОГО ЕСТЬ АНТИТЕЛА К КОРОНАВИРУСУ?

29 июня 2020 13:13. Тема: Коронавирус в Кыргызстане (1787 материалов)

Научно-производственное объединение «Профилактическая медицина» будет заниматься определением антител к коронавирусу. Глава организации Омор Касымов ответил на вопросы Kaktus.media.

— Минздрав неоднократно заявлял, что намерен, как в Москве, начать проводить скрининговые исследования, чтобы выяснить, у кого в Кыргызстане уже выработан иммунитет к коронавирусу. Что это за исследования?

— С ВОЗ имеется соглашение для проведения скрининг-исследований с помощью серологических экспресс-тестов. Планируется, что ВОЗ предоставит до 5 000 тестов, сертифицированных в европейской зоне. В Москве проводили такой скрининг (ИФА-диагностика) и выяснили, что уже почти 20% жителей имеют антитела к COVID-19.

— Такого количества тестов хватит?

— 5 000 тестов достаточно. Мы возьмем разные группы из разных районов: разные возрастные группы, разные области. Есть специальная методика для экстраполяции и вычисления математическим методом процент населения, имеющий антитела.

— Почему мы сами не можем купить тесты?

— Законодательство таково, что тесты должны быть сертифицированы в нашей стране, а производители качественных тестов к нам их не завозят. У нас было три вида китайских тестов, мы дали отрицательный результат — это хлам настоящий. Ничего не дает.

— Когда начнется скрининг?

— У нас все для проведения исследования готово. Мы ждем поставку от ВОЗ.

ISSN 1694-8068 (Print)
ISSN 1694-805X (Online)